PPLK

Blattläuse:

BYDV

CYDV

Zikaden:

WDV

BDV

BYDV:

->Luteovirus

->ssRNA-Genom

->Phloem

->Persistent, nicht propagative Übertragung

->Hauptvektor: Blattlausarten

WDV:

->Geminiviren

->ssDNA-Genom

->“Mastreviren”

->Phloem

->Persistent, nicht propagative Übertragung

->Vektor: Zikaden

Symptome: Verzwergung, Blätter goldgelb bis orange, Nekrosen in Leitbündlen, starke Bestockung (kein/verkümmertes Wachstum nach oben)

Verbreitung (Vektor): Blattläuse, Phloem

Übertragung: persistent zirkulativ, keine Übertragung auf Blattlausnachkommen

Management: späte Saat bei Wintergetreide, frühe Saat bei Sommergetreide, Unterbrechung “Grünebrücke“, Vektorbekämpfung, Optimale N-Düngung

Wirtspflanzen: Gerste, Mais, Gräser (Weidelgräser)

Unterscheidung zu BaYMV nur im Labor möglich.

Gerstengelbmosaikvirus

Symptome: Strichelartige Aufhellung jüngster Blätter, nesterweise, Schädigung Wurzelsystem

Biologie: Bymovirus-Gruppe, fadenförmig, ssRNA, 3 Virus Typen (BaYMV-1, BaYMV-2, mildes Virus BaYMM)

Vektor: bodenbürtiger Pilz Polymyxa graminis

optimale Bedingungen: feuchter Boden, 11-20°C im Herbst, Verletztes Wurzelsystem, Kälteschock für Vermehrung erforderlich

Wirtspflanzen: Gerste

Management: keine direkte Bekämpfung, Maschinenhygiene, Vermeidung von Wind- und Wassererosion, später Saattermin, Fruchtfolge (max 25% Gerste), gute Drainage des Bodens

Unterscheidung zu BYDV nur im Labor möglich.

Gerstengelbmosaikvirus BaYMV

Symptome: Stichelartige aufhellung jüngster Blätter, nesterweise, Wachstum ist reduziert, Schädigung Wurzelsystem

Management: keine direkte Bekämpfung, Maschinenhygiene, Vermeidung von Wind- und Wassererosion, später Saattermin, Fruchtfolge (max 25% Gerste), gute Drainage des Bodens

Gerstengelbverzwergungsvirus BYDV

Symptome: Verzwergung, Blätter goldgelb bis orange, Nekrosen in Leitbündlen, starke Bestockung (kein/verkümmertes Wachstum nach oben)

Management: späte Saat bei Wintergetreide, frühe Saat bei Sommergetreide, Unterbrechung “Grünebrücke“, Vektorbekämpfung, Optimale N-Düngung

Microdochium nivale (Fusarium nivale)

Symptome: ungleichmäßiger Aufgang, vermindertes Auflaufen, gelb bis orange-braune Flecken, nesterweise

Biologie: keine Chlamydosporen/Sklerotien, Perithezien mit Asci, saprophyt, boden- und samenbürtig

optimale Bedingungen: lang anhaltende Schneedecke, hohe Luftfeuchtigkeit

Management: Saatgutbeizung, Fungizidbehandlung

Wirtspflanze: keine physiologische Spezialisierung

Wird häufig mit Thyphula-Fäule (Typhula incarnata) verwechselt

O. yallundae und O. acuformis

Symptome: Befall der Leitbahnen, Umknicken , Vermorschung Halm, nesterweise

Biologie: Fruchtfolgeerkrankung, Dauermyzel im Boden, Ertragsausfall, Ernteschwierigkeiten, Qualitätsverlust (Kümmerkorn…)

Erreger unterscheiden sich in Aggressivität , “Infektionsstrategie”, Entwicklungsgeschwindigkeit, Sensitivität Fungizide und Resistenzlevel

Management: Fruchtfolge (>30% Blattfrucht, 2 Jahre Anbaupause), Bekämpfung Ungräser (Zwischenwirte), Kalkstickstoffgabe im Frühjahr, Warndienst

Wirtspflanze: Weizen > Gerste > Roggen > Hafer

optimale Bedingungen: feucht-kühl (5-15°C), vor allem bei Weizen

Blumeria graminis f. sp. tritici (an Weizen)

Symptome: weißliche bis hellgraue mehlartige Pusteln, chlorotische Flecken, Myzel an älteren Flecken gelblich-graubraun

Biologie: Resistenzen temporär, verlieren schnell Wirksamkeit

Management: Fruchtfolge, Ernterückstände einarbeiten, Hauptwindrichtung berücksichtigen, Standweite, Sortenwahl, harmonische Düngen, Spätsaaten, natürliche Gegenspieler

Wirtspflanzen: Wildgräser, verschiedene Wirtspflanzen für verschiedene ff spp.

optimal Bedingungen: 10-22°C, geringe Sonneneinstrahltung (geringe Wachsschicht), hohe Luftfeuchtigkeit (>50%), Wasser/Niederschlag schlecht (Konidien platzen, werden abgewaschen), trockene Witterung-> weniger N-Mobilisation-> nicht anfälliges Gewebe

P. teres

Symptome: braunes Netzmuster in länglichen, gelben Aufhellungen, kleine dunkelbraune Blattflecken

Biologie: perthotroph, Produktion von Toxinen

Entwicklung: Pseudothezien, Primärinfektion durch Ascosporen

Management: Fruchtfolge, Bodenbearbeitung, Sorten, Ausfallgetreide, gesundes Saatgut, Fungizide

Wirt: Gerste

Getredeisolate haben eine physiologische Spezialisierung —> unterscheiden sich in Pathogenität -> Anfälligkeit

P. nodorum

Symptome: verbräunte Blattscheide, hellbraune und nekrotische Flecken, helbraun-beige Flecken auf Hüllspelzen, dunkel-violettbraun begrenzt

Verbreitung: (Ascosporen) Ernterückstände und Ausfallgetreide, Verbreitung der Konidien mit Spritzwasser

Management: gesundes Saatgut/Sortenwahl, Verzicht auf WW-Frühsaaten, Verhinderung des Lagers, Zurückhaltende N-Düngung, keine Halmverkürzer

Puccinia striiformis

Wirt: Weizen, Gerste, Zwischenwirte

Optimale Bedingungen: Keimtemperatur 0-22°C, LF min. 50%, Verbreitung über Wind

Management: Sortenwahl (Risikostreuen), hohe N-gaben, Ausrottung ZW, Bodenbearbeitung, keine dichten Bestände, späte Herbstsaat, Ausfallgetreide beseitigen – „Grüne Brücke“

Puccinia recondita

Symptome: an Bättern rostbraune Sporenlager

Biologie: Zwischenwirt, auf ZW gebildete Sporen infizieren Getreide, Windverbreitung (Uredosporen) Formae speciales – wirtsspezifisch

Management: Sortenwahl (Risikostreuen), hohe N-gaben, Ausrottung ZW, Bodenbearbeitung, keine dichten Bestände, späte Herbstsaat, Ausfallgetreide beseitigen – „Grüne Brücke“

Tilletia caries

Symptome: Halme etwas verkürzt, Symptom nicht in der Ährenmitte, anstatt Körner ”Brandbutten” = weich, mit schwarzer, schmieriger nach Heringslake riechender Masse, später hart und schwarzbraun

Wirt: Winterweizen (seltener Sommerweizen und Dinkel)

Biologie: Keimlingsinfektion, Infektion über Boden, Wind, Stallmist im Herbst

Optimale Bedingungen: wärmere Gebiete, milde, wärmere Herbstwitterung (sehr tiefe tem.-> befallsmindernd)

Tilletia controversa

Symptome: Halme verkürzt, übermäßige Bestockung, Brandbutten (Fischgeruch), Qualitätsmangel, nicht für Fütterung geeignet (Verbrennen, Alkoholgewinnung), (Jungpflanzeninfektion, da über den Boden)

Management: Reinigung der Erntegeräte, späte Herbstaussaat, Fruchtfolge, geprüftes Saatgut, Sortenwahl, Abbürsten, Beizung

Optimale Bedingungen: rauhere und höher gelegenen Lagen mit länger anhaltenden Schneedecken, kühle Bodentemperaturen (0-5 °C) und Lichteinfluss

Verbreitung: Brandsporen überleben in den Verdauungsorganen, kontaminiertes ungebeiztes Saatgut oder kontaminiertem Stroh, Übertragung direkt über infiziertes Saatgut selten

Wirt: Winterweizen, Dinkel (Winterroggen, -triticale)

Ustilago nuda, Gerstenflugbrand

Ustilago tritici, Weizenflugbrand

Ustilago avenae, Haferflugbrand

Symptome: schwarz-braune Sporenlager, Brandährchen von silbrigen Häutchen überzogen, leere Spindel steht aufrecht im Bestand, schwächerer Wuchs

Optimale Bedingungen: Sporenkeimung 18-20°C Gerste, 20-26°C Weizen, hohe Luftfeuchtigkeit

Management: Sortenwahl, anerkanntes Saatgut, Testung von Nachbausaatgut, Saatgutbeizung -> Präventiv (Saatgut -> Embryoinfektion)

Taubährigkeit, Fusarium spp., Fusarium graminearum

Symptome: Taubährigkeit (partielle Weißährigkeit), rötliche Sporenlager, Ausbleichzone mit dunklem Rand bei Hüllspelzen, Kümmerkorn

optimale Bedingungen: Niederschläge während Blüte begünstigen Infektion, 25°C und 24h Nässe, keine Infektion unter 15°C, großtropfige Niederschläge fördern die Verbreitung

Management: Fruchtfolge, Bodenbearbeitung, Körnermais nicht als Vorfrucht von Winterweizen, ausgewogene Pflanzenernährung, Ernte nicht unnötig hinauszögern, < 13 % Kornfeuchtigkeit, Reinigung des Erntegutes

Bedeutung: Schlechtere Kleberqualität, Mehlausbeute, Backeigenschaften, Mykotoxinbildung (DON, ZON, Fumonisine, NIV)

DON (hemmt Proteinbiosynthese)

Auswirkungen bei Tieren:

->akute Vergiftung: Nekrosen des Intestinaltrakts, Knochenmarks, Lymphgewebes, Nieren- und Herzschäden

->subchronische Dosen: schlechtere Nährstoffaufnahme im Darm, Schwächung des Immunsystems, geringere Futteraufnahme, Futterverweigerung, Erbrechen, Leistungsminderung

ZON (hormonell wirksam (östrogene und anabole Wirkung))

Auswirkungen bei Tieren:

Uterusvergrößerung, Zysten an den Ovarien, Ödeme an der Vulva, Fruchtbarkeitsstörungen, Scheinträchtigkeit, abnorme Brunstzyklen, Verminderung der Spermaqualität, Kanzerogenität

➔ Schweine reagieren besonders empfindlich

Plenodomus lingam (früher A Typ) Plenodomus biglobosus (früher B Typ)

Wirt: Raps, Kohl und anderen Kruziferen (Senf, Hederich,Ackerhellerkraut, …)

Symptome: Stängelläsionen, Läsionen mit dunklem Rand und kleinen Punkten, an der Stängelbasis Fäule, Einschnürungen (Einschränkung Wasser- und Nährstoffversorgung), Befall der Schoten möglich

Management: weite Fruchtfolge, Sorten (Saatgutübertragung möglich), Unkrautbekämpfung, Einackern der Pflanzenrückstände, Einsatz von Wachstumsreglern zur Verbesserung der Winterhärte mit fungizider Nebenwirkung, (Fungizid)

Biologie: Pseudothezienbildung, aktive Ausschleuderung der Ascosporen, Hyphen penetrieren Pflanzengewebe über Wunden oder Stomata, signifikant morphologische Unterschiede zw beiden

intensive Bestandesführung -

hoher Anteil an Raps in der Fruchtfolge

hohe Anbaudichte von Raps im jeweiligen Gebiet

Verwendung einer krankheitsanfälligen Sorte

hohe Ertragserwartung

konsequent durchgeführte Bekämpfung von Schadinsekten (Stängelschädlinge)

gleichmäßige und gute Entwicklung des Bestandes

rechtzeitige und ausreichende Düngung

Sclerotinia sclerotiorum

Symptome: bleiche, hellbraune Verfärbungen, Stängelinneres meist hohl, Sklerotienbildung

Wirt: 225 Gattungen in 64 Familien

Biologie: Medulla = helle, innere Schicht (Glucanen, Proteinen), Rinde = dunkle, äußere Schicht (Melanin), zellwandabbauender Enzyme und Toxine (Pflanzengewebe wird abgetötet), Entwicklung von Apothezien aus geringer Bodentiefe, Freisetzen der Ascosporen, Ausbildung eines unterirdischen Myzels und Eindringen über das Wurzelsystem

optimale Bedingungen: in feucht-kühlen und wintermilden Lagen, in Gebieten mit intensivem Rapsanbau in der Fruchtfolge

Management: weitgestellte Fruchtfolge, Saatgutübertragung möglich, Sortenwahl, ausreichende Standweiten, Bestandeskontrolle, Umbruch bei hohem Befall, Unkrautkontrolle (= potentielle Wirtspflanzen), Minimalbodenbearbeitung, Kalkstickstoff im Frühjahr, Fungizideinsatz, Einsatz biologischer Gegenspieler (Mykoparasit —>Contans)

Carpogene Keimung

Produktion von Apothezien

unter feuchten Bodenbedingungen

braucht ca. 10 – 21 Tage (abhängig von Temperatur und Feuchtigkeit)

Apothezium kann über mehrere Tage hinweg ca. 10 Millionen Ascosporen freisetzen

= häufigste Form bei Raps

Myceliogene Keimung

Keimung durch direkte Hyphenentwicklung

nur bei ausreichender, exogener Nährstoffversorgung (Exsudate) und bei hoher Feuchtigkeit

Hyphen infizieren Wurzeln, Wurzelhals u.a. Pflanzenteile, die direkt in Bodenkontakt stehen

selten bei Raps

Alternaria brassicae

Symptome: nekrotische Läsionen mit hellen und dunklen Zonen, mit chlorotischem Hof, Blätter vergilben, sterben ab, frühzeitiges Aufplatzen

Biologie: saprophytisch, Konidienkeimunge und Ausbreitung erfordert freies Wasser, Penetration auch direkt durch die Kutikula, Toxinbildung

optimale Bedingungen: feuchtwarme Regionen und Sommer, günstig 21-27 °C, 95-100 % LF, Taubildung nicht förderlich

Plasmodiophora brassicae

Symptome: Jungpflanzen kümmern, ältere Blätter vergilben, Welkeerscheinungen, kompakte Verdickungen an den Wurzeln, im Inneren weiß gefärbt und fest

Wirt: Kruziferen

Management: kein Fungizid, Fruchtfolge, Unkrautbekämpfung, Sorten, staunasse Böden vermeiden, Kalkung und Erhöhung des Boden pH-Wertes, günstige Bodenstruktur, Bodenentseuchungsmaßnahmen (Kosten)

Verticillium longisporum (krankhafte Abreife)

Symptome: keine typischen Welkesymptome, halbseitige Vergilbung (Laubblätter), streifige hellgrün bis hellbraune Verfärbungen an Stängeln, verfärben sich grau

Biologie: Stimulierung der Mikrosklerotien-keimung durch Wurzelexsudate, Hyphenentwicklung und Konidienbildung, V. dahliae (nicht relevant bei Raps)

Management: keine resistenten Sorten, keine Fungizide, Fruchtfolge, Beachtung potentieller Wirtspflanzen (Raps, kruzifere Zwischenfrüchte, Unkräuter)

Fusarium culmorum

Symptome:

Kolbenfäule: Weißliches bis rosa Pilzgeflecht, hohes Mykotoxinrisiko (vgl. Getreide)

Wurzel- und Stängelfäule: schwarze Flecken an den Wurzeln, Fäule bis zum Stängel, Knoten werden braun und weich, Stängelbasis vermorscht, Stängelbruch

Ustilago maydis

Symptome: stark hypertrophierendes Gallengewebe, Gallen mit brauner Sporenmasse gefüll

Biologie: Sporenkeimung wird durch Licht stimuliert, polyzyklisch

Fütterung: Sporen in Silage und Stallmist überlebensfähig, Beulenbrandbefall bis 20 % → kein Einfluss auf Futteraufnahme, abfallen der Nettoenergie, höherer Eiweißabbau, kein Einfluss auf Tiergesundheit (allergische Reaktion möglich)

Optimale Bedingungen: 8-38°C (Keimung), wärmere Gebiete

Management: gut nährstoffversorgte Bestände zeigen meist höheren Befall, keine direkte Bekämpfung, Minderung Primärinfektion durch Kalkstickstoff, Sortenwahl, Keine Leguminosenuntersaaten, bei längeren Trockenperioden zusätzliche Wasserversorgung

Maiskopfbrand

Sporisorium reilianum

Biologie: Saatgutübertragbar, Keimtemperaturen über 16 °C notwendig

Turcicum-Blattfleckenkrankheit bei Mais

Exserohilum turcicum

Wirtspflanzen = Süßgräser, v.a. Mais, Sorghum, Johnsongras, Sudangras

Symptome: lange, schmale Blattflecken, erst wässrig durchscheinend, verringerte Assimiliationsfläche, verringerte Stärkeeinlagerung, gestörte Kornausbildung

Optimale Bedingungen: Infektionen: 18- 27 °C, hohe Luftfeuchtigkeit (z. B. Taubelag) (Sporulation auf Blattunterseite)

Management: vielseitige Fruchtfolge, Einarbeiten der Ernterückstände, toleranter Sorten, Stress vermeiden (Bodenstruktur, Nährstoffmangel), Fungizidbehandlung bei Zuckermais eher weniger

Sclerotinia sclerotiorum

Wirt: Hauptkrankheit bei Sojabohne, nicht in Mais oder Getreide

Diaporthe(Hülsen-/Stängelfäule)/Phomopsis(Samenfäule) Komplex „Soybean stem canker“

ein pilzlichen Krankheitskomplex, der von mehreren Arten der Gattung Diaporthe/ Phomopsis verursacht wird

samenbürtig

Ertragsausfälle bis zu 100%

Management: gesundes Saatgut, resistente Sorten, abwechselnde Fruchtfolge mit Mais und anderen Nicht-Leguminosen, Einarbeiten infizierter Pflanzenrückstände, Ernte in einer relativ trockene Periode, zur Reife rasche Ernte, Soja kann auch zwei Jahre angebaut werden

Peronospora manshurica

Symptome: gelb-grüne Flecken, später dunkelbraune Verfärbung, auf der Blattunterseite weiß-graue bis zart violette Verfärbungen

Biologie: Überdauerung als Oosporen im Pflanzengewebe (Saatgut, Blattrückstände)

Management: gebeiztes, gesundes Saatgut, Sortenwahl, Saatbeetvorbereitung, Fungizide

Wildfeuer (Bakterienbrand), Bakterielle Blattdürre, Bakterielle Pustelkrankheit

Häufig Mischinfektionen, regnerisches Wetter ist günstig, keine zugelassene Bakterizide

Fruchtfolge (Einbau von Weizen und Mais), Entfernen der Ernterückstände, Felder bei feuchter Witterung nicht bearbeiten

Sojabohnenmosaikvirus

Symptome: stark gekräuselte Blätter, Blattränder sind abwärts gebogen, Mosaik, verkümmerte Hülsen, infizierte Samen braun-schwarz

Übertragung: Saatgutübertragung, Pollen, Blattlausübertragung

Management: gesundes Saatgut, Eliminierung befallener Pflanzen, resistente Sorten, Vektorenbekämpfung, direkte Bekämpfung (Viruzide) nicht möglich

Nanoviren - Pea necrotic yelow dwarf virus (PNYDV)

sehr kleine einzelsträngige DNA-Viren

Symptome: gestauchte Pflanzen, beeinträchtigte Wurzel- und Knöllchenbildung, vergilbte Blätter, Absterben der Triebspitzen, schlechter Hülsenansatz, Totalausfall möglich

Wirtspflanzen: Erbse, Ackerbohne, Linse, Sommerwicke, Pannonische Wicke, Kichererbse, Rauhaarige Wicke

Übertragung: Grüne Erbsenblattlaus, Schwarze Bohnenblattlaus (nicht mechanisch, nicht über Saatgut)

Symptome: rötlichbraune Flecken mit Pyknidien im Zentrum, dunkler Rand, Befallsstellen brechen aus, stark befallene Blätter sterben vorzeitig, Hülsen schrumpfen, Befallsstelle sinkt ein, Samen mit dunkelbraunen bis schwarzen Flecken, Samenausbildung reduziert

Didymella pisi

Samenbürtig, Bedeutung verloren

Peyronellaea pinodes

samen- und bodenbürtig, Blattinfektionen über Ascosporen und Pyknosporen, bedeutsamste Blattkrankheit innerhalb des Komplexes

Didymella pinodella

samen- und bodenbürtig, v.a. Erreger an der Wurzel- und Stängelbasis

Management (bei Erbse): Saatgutproduktion in Trockenen Gebieten, gesundes Saatgut, Sortenwahl, Fruchtfolge, Fungizid, Zersetzung der Ernterückstände durch Zerkleinern fördern

Phoma, Fusarium, Rhizoctonia spp. u. a

Symptome: verlangsamtes Wachstum, Einrollen der (Älteren-)Blätter von unten nach oben, allmähliches Absterben, Welken der Triebspitze, Wurzel und Stängelgrund schwarz verfärbt und vermorscht

Management: Teilerfolge durch Saatgutbeizung, mindestens fünf Jahre Anbaupause, Aussaat nur in ausreichend abgetrockneten und erwärmten Böden

Peronospora viciae (falscher Mehltau)

Symptome: helle, durchscheinende Flecken auf der Blattoberseite, dichter grauer Pilzrasen blattunterseits, Flecken werden gelb bis braun, Befallsstellen verbräunen unter trockenen Bedingungen, breiten sich unter kühl-feuchten Bedingungen aus

Mag keine warmen und trockenen Witterungsperiode nach dem Frühjahr

Erysiphe pisi (echter Mehltau)

Symptome: kleine, diffuse Flecke auf der Blattoberseite, Flecke vergrößern sich, weißliches bis graues Myzel wird sichtbar, Hülseninfektionen: Erreger kann bis in das Innere vordringen und die Kornausbildung beeinträchtigen

optimale Bedingungen: warme, trockene Tagesbedingungen und nächtliche Taubildung

Uromyces pisi-sativi

Symptome: hellbraune Uredosporenlager auf Blattunter- und - oberseite, Ranken, Stängeln, Bildung von schwarz-violetten Teleutosporenlager, Blätter vergilben, kümmerlicher Wuchs, Wasserverluste → Pflanzen vertrocknen

wirtswechselnd: Zwischenwirt = Zypressenwolfsmilch

Botrytis fabae

Symptome: Blätter mit zahlreichen kleinen, runden, schokoladenfarbige Flecken, häufig mit rötlichem oder graugrünem Rand, unter feuchtwarmer Witterung große braune Flecken, teilweise dunkelbraun bis grau umrandet, mit ringförmiger Zonierung

Wirtspflanzen: Ackerbohne, Phaseolus-Bohne, Erbse, Linse

Biologie: Überdauerung auf Wirtspflanzen, als Sklerotien in Pflanzenrückständen, Saatgutübertragung möglich

Optimale Bedingungen: Temp (3-28°C), Läsionenvergrößerung zw. 70 und 100 % rel. LF, anhaltende Regenperioden begünstigen Sporulation, Infektion und Ausbreitung

Management: Fruchtfolge, keine dichten Bestände (breitere Standreihen) in windgeschützten Lagen, ausreichende P, K-Versorgung, Vermeidung von Staunässe, schnelle Verrottung von Ernterückständen, keine resistenten Ackerbohnensorten (unterschiedliche Anfälligkeiten), Fungizideinsatz

Erbsen Botrytis cinerea

Symptome: graue Blattläsionen, braune, häufig kreisrunde, matschige Läsionen am Hülsenanfang/-ende, bei nachfolgender Trockenperiode → Befallsstellen trocknen aus, verfärben sich orange-braun

sicherstes Erkennungsmerkmal (bei Feuchtigkeit) = mausgrauer Sporenbelag auf den Befallsstellen

optimale Bedingungen: feucht-warmer Witterung

Management: keine Resistenten Sorte, Fungizideinsatz (aber keine Routineanwendungen), bei starkem Krankheitsdruck chemische Bekämpfung ab Vollblüte wirtschaftlich, evtl. Doppelbehandlung notwendig

Grauschimmel an Leguminosen

weiter Wirtspflanzenkreis (über 200 Arten), befällt bevorzugt seneszentes bzw. verletztes oder geschwächtes Gewebe

optimale Bedingungen: v.a im schlecht durchlüfteten unteren Blattbereich, bei feuchter Witterung

Falscher Mehltau der Sonnenblume Plasmopara halstedii

Symptome: hellgrüne bis gelbe mosaikartige Flecken auf der Blattoberseite, weißer Sporangienrasen auf der Blattunterseite, Ertragsminderungen bis zu 50% ( 95%)

Biologie: Überdauerung mittels Oosporen und/oder Myzel in systemisch infizierten Wurzeln, Infektion meist über befallenes Saatgut, Bildung von Pathotypen (aktuell 14)

Wirtspflanzen: über 100 Spezies aus der Familie der Asteraceae

Management: weit gestellte Fruchtfolge, schnelle Verrottung der Pflanzenrückstände, Fungizideinsatz nicht nötig

Stagonosporopsis cucurbitacearum

Symptome: wasserdurchsogene, braune, sich allmählich schwarz verfärbende Flecken, zahllose, eng stehende Fruchtköper auf den Flecken, Kürbis fällt in sich zusammen, Bildung brauner, gummiartiger Exsudate am Stängel —> Ertragsausfall bis zu 35 %

Biologie: Ascomycota, Symptomausprägung durch vegetative Vermehrungsform (Pyknidienbildung), Pseudothezienbildung, keine physiologische Spezialisierung bekannt

optimale Bedingungen: Temp 20-25 °C und hoher Luftfeuchtigkeit

Management: Einarbeiten von Ernterückständen (rasche Verrottung), Kürbisse in isolierten Lagen anbauen, Fruchtfolge (2 Jahre), Saatgutbehandlung, Fungizideinsatz (Zulassungen)

Zucchinigelbmosaik (ZYMV) an Ölkürbis

Symptome: blasenartig aufgewölbte, scharf abgegrenzte Blattpartien, gelbe, mosaikartige Musterungen, steil aufrecht stehende Blätter, ältere Früchte deformiert, stark verbeult, jüngere Früchte können aufplatzen , Wuchsdepressionen

Biologie: Potyvirus, ssRNA (~ 9600 Nucleotide)

Übertragung: Blattläuse (nicht persistent), mechanische Verletzungen, Saatgut

Wirtspflanzen: Kürbisgewächse (Melonen, Zucchini, Gurken, Kürbis, Wassermelone, Wildtypen), Ertragsverluste bis zu 95 % (Menge, Ölqualität)

Management: v.a. Maßnahmen zur Verhinderung/Verzögerung der Virusübertragung, virusverdächtige Einzelpflanzen entfernen, Saatgutbehandlung möglich, Blattlausbekämpfung, resistente Sorten

Pectobacterium spp. (Erwinia spp.)

Symptome: wasserdurchsogene Befallsstellen, leicht einzudrückende Kürbiswand, äußerlich keine weiteren Auffälligkeiten, Zusammensacken der Kürbisse mit fortschreitendem Alter, säuerlich mehliger Geruch des zersetzten Fruchtfleisches (extremer Gestank)

Falscher Mehltau an Mohn Peronospora arborescens,

Symptome: wulstig aufgetriebene Verkrümmung der Mohnblätter, Kümmerwuchs und Habitusdeformationen, Blattränder nach unten eingerollt, bei feuchtwarmer Witterung grauviolettes Pilzmyzel an den Blattunterseiten, Infektion der Samen

Ertragsverluste bis zu 40 %

optimale Bedingungen: anhaltende Niederschläge und niedrige Temperaturen im Vorsommer und Sommer

Management: Nutzung trockener Anbaulagen, weitgestellte Fruchtfolgen (> 3 Jahre), befallsfreies Saatgut, Beizung des Saatgutes, Fungizideinsatz

Falscher Mehltau an Leindotter

Hyaloperonosora camelinae

Symptome: weißlicher Pilzüberzug auf Blättern, Stängeln und Schötchen (schon ab Blühbeginn), verdrehteTriebe, tw. Kümmerwuchs, Pflanzenteile welken, verbräunen, sterben ab, Schötchen reifen vorzeitig, Samenübertragbar

Grauschimmel bei Hanf Botrytis cinerea

optimale Bedingungen: Auftreten bei kaltfeuchter Witterung im Frühsommer

Symptome: befallene Pflanzen brechen ab oder fallen um

Hanfkrebs Sclerotinia sclerotiorum

Symptome: Stängeln mit weißlich - grünes Pilzgeflecht, das bis zum Mark durchdringen kann, unterer Stängel von Myzel überzogen, schwärzliche rundliche Sklerotien im Myzel

Auswirkung: negativer Einfluss auf Fasergehalt und Faserqualität

Flachswelke (Flachsmüdigkeit) Fusarium oxysporum f. sp. lini

Symptome: Schlechtes Auflaufen, Absterben der Keimpflanzen, Umfallen aufgelaufener Pflanzen, Welke der Blätter und Triebspitzen, Aschgraue Verfärbung der Wurzeln

Management: Weitgestellte Fruchtfolge (6-7 Jahre), Sortenwahl, Saatgutbeizung, frühe Saat, ausgewogene Düngung

Cuscuta epilinum - Flachsseide

Biologie: parasitische Samenpflanze, Saugorgane - Anheften an Lein

Symptome: Geflecht gelblicher Stängel umspinnt den Lein und entzieht Nährstoffe, Lein stirbt vorzeitig ab

Auswirkung: Beeinträchtigung der Faserqualität, Ertragsreduktion

Management: Cuscuta-Nester vor der Leinblüte eliminieren, unterschiedlichen Samengröße → leichte Reinigung möglich

Pythium ultimum

Symptome: schlechtes Auflaufen der Keimlinge, einzelne Fehlstellen in der Reihe bis zu größeren Kahlstellen, graubraune bis schwarze Flecken an der Wurzel oder an den Keimblättern, Welken der jungen Rübenpflanzen, schwarze Verfärbungen und Einschnürungen am Wurzelhals, später auch am Rübenkörper, Absterben und Umfallen der Pflanzen

Erysiphe betae

Symptome: rundliche, grauweiße Pusteln, schmutzig-grauen Myzelbelag, Anfangsbefall vorwiegend blattoberseits, später auch blattunterseits, Befall v.a. an äußeren und mittleren Rübenblättern, tw. auch an den Herzblättern,

Biologie: Bildung von Chasmothezien auf den Befallsstellen, obligater Parasit, Verbreitung im Bestand v.a. durch Konidien, geringe Bedeutung der Chasmothezien

Optimale Bedingungen: über 30-40 % Luftfeuchtigkeit, (kein Niederschlag), Temperaturen über 15 °C (optimal 25 - 30 °C), stark wechselnde Tag- & Nachttemperaturen und Taubildung, Licht beeinflusst Keimung positiv, trockenen und warmen Regionen bzw. Jahren

Auswirkungen: Befall mindert Assimilationsfläche, gesteigerte Atmungsintensität – Rückgang des Rübenertrages, Absinken des Zuckergehalt, Anstieg der unerwünschten Nichtzuckerstoffe (Melassebildner, v.a. Alpha-Amino-Stickstoff)

Uromyces beticola

Wirtspflanzen: Zuckerrübe, Mangold, Rote Rübe, Spinat,

Symptome: auf Blattober- und -unterseite, rostbraune Pusteln (häufig mit chlorotischem Rand), häufig starker Einzelpflanzenbefall, stark befallene, ältere Blätter sterben ab, jüngere Blätter aufrecht, kräuseln sich, vergilben langsam

Biologie: autözischer Rostpilz

Optimale Bedingungen: nach milden Wintern direkte Infektion durch Uredosporen, empfindlich gegen hohe Temperaturen, stärkste Ausbreitung bei 15-22 °C, gefördert durch hohe N-Versorgung

wirtschaftliche Bedeutung gering, meist nicht bekämpfungswürdig

Ramularia-Blattfleckenkrankheit – Ramularia beticola

Symptome: unregelmäßige, eckige, graubraune Flecken, durch undeutlichen Rand abgegrenzt, Befall v.a. an älteren Blättern, Herzblätter meist ohne Befall, häufig als Mischinfektion

Wirtspflanzen: Chenopodiaceaen

Auswirkungen: Reduktion des Zuckerertrages um bis zu 25 %

Optimale Bedingungen: maritime oder kühl-feuchte Lagen, Temp 16-20 °C, über 70% LF

Infektion über die Stomata

Bakterielle Blattflecken – Pseudomonas syringae

Verwechslungsmöglichkeit mit Cercospora, Unterscheidung oft nur mittels Lupe möglich

Symptome: unregelmäßige Flecken, Innenhof glasig aufgehellt, ohne Vermehrungsstrukturen, kann nur durch Verletzungen (Hagel, mechanische Bearbeitung, tierische Schädlinge) bei feuchtkühlem Wetter die Blätter infizieren.

—> wirtschaftlich unbedeutend

Cercospora-Blattfleckenkrankheit – Cercospora beticola

Symptome: Nekrosen v.a. an älteren Blättern, Gewebe anfangs dunkelbraun, später im Mittelteil graubraun bis silbrig, Herzblätter meist befallsfrei, ananasartiger Rübenkopf

Auswirkungen: geringerer Zuckerertrag, Befallsverluste bis zu 40 %, schlechtere Lagerfähigkeit

Wirtspflanzen: Mangold, Spinat, Rote Rüben, Futterrüben, div. Unkräuter (Amaranthus, Chenopodium, …)

Optimale Bedingungen: Temp Keimung 25-30 °C und 100 % LF optimal, Sporulation: 27 °C, 100% LF

Management: Entfernung von Pflanzenresten, gute Bodenbearbeitung, Fruchtfolge (4 Jahre), Saatgutbeizung, Sortenwahl, mäßige Düngung, Verzicht auf Beregnung, Fungizide (Warnsysteme)

Rhizoctonia solani

Symptome: Pflanzen welken von außen nach innen, vergilbende Blätter liegen kranzförmig um die Rüben auf dem Boden, dunkelbraune, trockene Faulstellen

Biologie: Sklerotien, vegetative Entwicklung (keine Sporenbildung), hohes Saprophytisches Potenzial, Hyphen dringen in das Pflanzengewebe ein (zellwandauflösende Enzyme)

Optimale Bedingungen: schwere Böden mit schlechter Struktur (Sauerstoffmangel, niedriger pH-Wert, hang zur Staunässe), hohe Bodenfeuchte, hohe Temperaturen, enge Rübenfruchtfolgen mit Mais

Auswirkungen: Verluste im Rübenertrag (2 % - 50 %), Reduktion des Zuckergehaltes um 60 % möglich, geringe Lagerfähigkeit, schlechte Verarbeitungsqualität, tw. Aussortieren fauler Rüben notwendig

Management: Sortenwahl, Resistenzzüchtung, Fruchtfolge (max. 33% Zuckerrübe in der Fruchtfolge, Berücksichtigung von Mais, geeignete Zwischenfrüchte), Bodenbearbeitung (biologische Aktivität, Vermeidung von Strukturschäden, geeignete Rodetermine, …), Pflanzenschutzmaßnahmen (keine zugelassenen Fungizide)

beschreibt die Art der Hyphenfusion von Isolaten von R. solani und damit auch den Verwandtschaftsgrad zwischen zwei Isolaten

Einteilung in 4 Anastomosegruppen ( "Anastomosetypen„)

->C0: keine Reaktion, die Pilzhyphen nehmen sich gegenseitig nicht wahr

->C1: Kontakt und Festwachsen der beiden Zellen der Hyphen, die sich berühren, die Zellwände werden nicht durchbrochen

->C2: Kontakt und Zusammenwachsen der beiden Zellen, die sich direkt berühren, , keine Fusion des Zytoplasmas und keine Zelllyse, nachfolgend Zelltod der an der Fusion beteiligten Zellen

C3: perfekte Fusion, Kontakt und Zusammenwachsen der Zellen, Zellwandfusion benachbarter Zellender Pilzhyphen ohne Zelltod, Austausch von Zellkernen von einem Individuum zum anderen, Fusion des Zytoplasmas mit Zelllyse

aktuell: 14 AG mit zusammen 31 Untergruppen von R. solani

Anastomosetyp 2-2 IIIB: Späte Rübenfäule (Wirtspflanzen ZR, Mais, Reis, Sorghum, Soja)

AG 1, AG 2-1, AG 2-2 IV, AG 4 und AG 5 auch auf Zuckerrübe, verursachen andere Krankheiten

Bestimmung der AG: Molekulare Analyse:

->direkte Sequenzierung der rDNA-ITS-Regionen schwierig

->Klonen und die PCR-Amplifikation mit AG- oder subgruppenspezifischen Primern

(BNYVV) – Aderngelbfleckigkeitsvirus

Symptome: auffällig gelbe Chlorosen entlang der Blattadern (selten und nur an Einzelpflanzen), nesterweise Aufhellungen im Bestand, Blattsymptome, die auf Störungen in der Nährstoffversorgung (Stickstoff, Bor, Mangan) sowie im Wasserhaushalt schließen lassen, Welke bei hohen Temperaturen (trotz ausreichender Feuchtigkeit), eingeschnürter Rübenkörper im unteren Bereich, Seitenwurzeln rechtwinkelig abstehend, dichter, dunkler Wurzelbart, Verbräunung der Leitbündel nach Anschnitt der Wurzelspitze

Auswirkungen: anfällige Sorten: Ertragsverluste bis zu 80 %, bis zu 60 % reduzierte Zuckergehalte möglich

Biologie: stäbchenförmiges Virus, ssRNA, Benyvirus, A-, B-, P-Typen (Hinweis auf unterschiedliche Entwicklung und Ausbreitung )

Verbreitung: Bodenpilz Polymyxa betae, häufig vergesellschaftet mit BSBV (beet soil-borne virus) und BVQ (beet virus) – gleicher Vektor

Wirtspflanzen für Polymyxa betae: Rübe, Spinat, Unkräuter (Vogelknöterich, Ackerkratzdistel, Ehrenpreis,Ackerwinde, …)

Management: tolerante Sorten, Fruchtfolge, Vermeidung von Staunässe, Anwendung physiologisch saurer Dünger, Vermeidung der Bodenverschleppung, keine direkte Bekämpfung möglich (Vektor & Virus)

Gürtelschorf Ursache nicht vollständig geklärt

Bormangel, Manganmangel

Rhizoctonia solani

großer Wirtspflanzenkreis (über 200 Arten, über 60 Pflanzenfamilien)

Wirtspezialisierung durch Anastomosegruppen („genetische Familien“): AG-3 (AG-4 HG-1, AG-7, AG-9)

Symptome: Weißhosigkeit, Wipfelrollen der Blätter, „dry-core“-Symptome an Knollen, Sklerotien auf der Knollenschale (auch im Lager möglich), Infektion der Wurzeln/unterirdischen Sprossteile durch Myzel

Biologie: Myzel überdauert saprophytisch im Boden oder entwickelt sich aus Sklerotien, Verbreitung durch Ernterückstände und der an den Knollen befindlichen Sklerotien, keine Sporenbildung in der vegetativen Phase

Management: Beizung, gesundes und befallsfreies Pflanzgut, Förderung eines schnellen Auflaufens, Fruchtfolge, Vorkeimung oder Pflanzgut verwenden, das sich im Keimstimmung befindet, Vermeidung von unverrotteten Ernterückständen

Phytophthora infestans

Symptome: infizierte Stängel und Blattstiele werden braun, von Blatträndern ausgehend Fleckenbildung, Flecken gelbgrün, wirken wasserdurchsogen, weißer Sporenrasen blattunterseits, Blätter vertrocknen oder verfaulen, Knollen mit oberflächlich eingesunkenen, unregelmäßigen, bleigrauen Flecken, Verbräunungen grenzen sich nicht scharf vom gesunden Gewebe ab, Gewebe verbräunt und fault, Trockenfäule

Biologie: Perthophytisch, epidemisch v.a. in niederschlagsreichen Jahren, durchschnittliche Einbußen 8-10 %, bei epidemischem Auftreten Einbußen bis 70%, Kreuzungstypen A1 und A2

Wirt: enger Wirtspflanzenkreis (Solanaceae), weltweit wichtigste Erkrankung (tw. begrenzender Faktor)

Management: Pflanzgutauslese, weitgestellte Fruchtfolge, Vorkeimen des Pflanzgutes, vorgezogene Pflanztermin, Optimierung des Kleinklimas, keine N-Überdüngung, räumliche Trennung unterschiedlicher Reifegruppen, Entfernen kranker Pflanzen aus dem Bestand, Nutzung diverser Warndienste, Ernte erst nach vollständigem Absterben des Krautes, Fungizide (Kupferpräparate, Synthetische PSM)

Alternaria solani

Symptome: „Sprühflecken“, unregelmäßige, eckige, scharfrandige und sich rasch vergrößernde Flecken anfangs v.a. auf den untersten Blättern, braune Nekrosen, konzentrische Ringe, übriges Blattgewebe verfärbt sich gelbgrün, Knollbenbefall meist erst nach der Ernte sichtbar, eingesunkene, unregelmäßige, dunkle Flecken auf Schale, befallenes Gewebe ist verbräunt, eingesunken, trockenfaul, Scharfe Abgrenzung zw. befallenem und gesundem Gewebe

Verwechslungsmöglichkeiten: Botrytis, Phytophthora, Mg-Mangel

Auswirkungen: 25 - 35 % weniger Stärkeertrag, negative auf die Größensortierung der Knollen

Optimale Bedingungen: Kartoffelbeständen, bei Stress durch zu geringe Nährstoffversorgung (vor allem zu wenig Stickstoff), Trockengebiet, v.a. bei über 22 °C und Wechsel von Feucht- und Trockenperioden

Management: gute Nährstoffversorgung, gesundes Saatgut, Sortenwahl, ausgereifte Knollen bei trockenem Boden ernten, beschädigungsfreie Ernte, weitgestellte Fruchtfolge, Einsatz von Fungiziden, bei der Ernte aussortierte Knollen nicht auf dem Feld belassen, optimale Lagerbedingungen

Blattrollvirus (PLRV)

Biologie: isometrisches ssRNA-Virus, Gattung = Luteoviren

Übertragung: im Phloem angesiedelt, durch Blattläuse (zirkulativ persistent)

Symptome: Primärinfektion: Einrollen der Triebspitze (Befall von oben nach unten), Sekundärinfektion: „Rollsymptome“ von unten nach oben, gestauchter Wuchs, steile Blatthaltung, Blätter hart und brüchig (metallisches Rascheln), Ertragsdepression: 20-30%

Wirtspflanzen (über 56 Arten): Solanaceen, Chenopodiaceen, Cruciferen, Asteraceen

Kartoffelvirus A (PVA)

Biologie: fadenförmiges ssRNA-Virus, Gattung = Potyviren, leichte, mittlere und schwere Virusstämme, Klassifizierung: Schwere Virose

Übertragung: Blattläuse (nicht persistent)

Symptome: Primärinfektionen meist latent, Sekundärinfektionen mit leichten Mosaiksymptomen, Rauhmosaik mit aufgewölbter Blattoberfläche, gewellte und gekrümmte Blattränder, Ertragsverluste: 40-80 %

Optimale Bedingungen: kalte Witterung fördert Symptomausprägung

Kartoffelvirus Y (PVY) Strichelkrankheit/Tabakrippenbräune

Biologie: fadenförmiges ssRNA-Virus, Gattung = Potyviren, Stämme: O, N, C und nordamerikanischer Typ (NA), N:O-Rekombinanten: PVYNTN , PVYN-Wilga, u.a.

Übertragung: nicht persistent durch Blattläuse (über 40 Arten), mechanisch

Wirtspflanzen: Solanaceae, Chenopodiaceae, Asteraceae, Amaranthaceae, Leguminosen, u.a.

gefährlichste Kartoffelvirose

Symptome: Ertragseinbußen bis zu 80 % (geringere Knollengröße, reduzierter Stärkegehalt), rekombinante Stämmen meist mit höherer Virulenz und verstärkter Ausbreitung

(A)Nicht-persistente Viren (z.B. CMV): Aufnahme aus Epidermiszellen infizierter Pflanzen; Anlagerung am Stylet, außerhalb des Vektors

(B)Semipersistente Viren (z.B. ToCV): nur im Phloem; Virus heftet sich mit Hilfe einer Minor-Capsid-Proteins (CPm) an die Bindungsstelle im Vorderdarm des Vektors, nach Häutung nicht mehr da

(C)Persistente, nicht-propagative Viren (z.B. TYLCV): nur im Phloem, Virus wird über Hämolymphe in primäre Speicheldrüse abgegeben, überlebt im Vektor, kann sich nicht vermehren

(D)Persistent-propagative Viren (z.B. TSWV): spezielles Protein unterstützt den Eintritt in Mitteldarmzellen – Replikationsort; Virus dringt über die röhrenförmige in primäre Speicheldrüsen ein, überlebt im Vektor, vermehrt sich

Keine direkte Bekämpfung von Viren

Pflanzkartoffelbestände möglichst großflächig von Konsumkartoffeln trennen

konsequente Beseitigung von Durchwuchskartoffeln in allen Kulturen

sachgerechte Unkrautbekämpfung

intensive Selektion, so früh wie möglich beginnen

Sortenwahl

Insektizideinsatz zur Bekämpfung der Vektoren

1. Pyrethroideinsatz zum Frühjahrsflug → Verhindern der Ansiedlung von Blattläusen im Bestand

2. Bei verstärktem Auftreten ungeflügelter Blattläuse: Einsatz eines systemischen Insektizids

3. Sommerflug: Blattlauspopulation auf niedrigem Niveau halten, Verhindern der Abwanderung virusinfizierter Läuse

Streptomyces scabiei

Biologie: Gram-positive, filamentöse Bakterien, Sporenbildung in spiralenförmigen Ketten, Pathogenität basiert auf der Bildung von Thaxtomin (Toxin), kein relevanter Antibiotikaproduzent

Symptome: Buckelschorf (Aufwölbungen), Kraterschorf (Vertiefungen) oder Normalschorf (ebene Flächen)

Auswirkungen: Qualitätsminderung, schlechtere Keimfähigkeit, kaum Ertragseinbußen

Wirtspflanzen: Zuckerrüben, Mohn, u.a.

Management: Sortenwahl, Einsatz von physiologisch sauren Düngern, Gründüngung

Verwechslungsmöglichkeiten:

Pulverschorf – Spongospora subterranea – Plasmodiophoramycota

Kartoffelkrebs – Synchytrium endobioticum – Chytridiomycota

Gattung Pectobacterium und Dickeya - Symptomkomplex

Schwarzbeinigkeit, bakterielle Weichfäule, Knollennaßfäule der Kartoffel

Symptome: Knollenbefall, manchmal erst im Lager auftretend, Fleisch ganz oder tw. Breiig, Schale bleibt erhalten, Übelriechend, krankes und gesundes Material durch dunkle Linie abgegrenzt, Befallsnester (vernässte Bodenstellen), Lagerungsprobleme

Übertragung: latent verseuchtes Pflanzgut, Boden und verrottende Pflanzenteile, Infektion über Bodenwasser bei hohen Niederschlägen oder Staunässe

Biologie: fakultativ anaerobe Bakterien (Entwicklung und Fäulnis auch unter Sauerstoffmangel), Eintritt über geöffneten Lentizellen, Verletzungen, Wachstumsrisse an Knollen und Stolonen

weiter Wirtspflanzenkreis

Optimale Bedingunge: nasse Bodenverhältnisse und hohe Bodentemperaturen

Management: einwandfreies Pflanzgut, Beschleunigung des Auflaufens durch Vorkeimung der Pflanzkartoffeln, Knollenbeizung (Cuprozin) zur Befallsreduktion, rechtzeitige Krautabtötung (gleichmäßige Abreife), Verringerung von Knollenbeschädigungen durch optimierte Rode- und Transporttechnik, Rodung nicht unter 10°C, Abbruch der Rodung bei Nässe, Selektion fauler Knollen, schnelle Abtrocknung der Knollenoberfläche, Lager- und Gerätehygiene (Desinfektion)

Potato stolbur phytoplasm

Symptome: Gelbverfärbungen der Blattränder, löffelartiges Einrollen der Blätter, Blätter und Triebe stehen steil aufrecht, an den Wurzeln trockenfäuleartige Symptome, Wasserentzug an vorhandenen Knollen ("Gummiknollenwelke")

Wirtspflanzen: Wein, Kartoffel, Tomaten, Salat, Paprika, Kleeseide, Flachsseide, Ackerwinde,Hahnenfußgewächse, Brennessel, Beifuß (v.a. Solanaceae)

Überträger: Zikaden (Wanderzikaden, Glasflügelzikaden, Kleezirpen, Triftenerdzikade)

Pflanzliche Überträger: Kleeseide (Cuscuta trifolii), Flachsseide (Cuscuta epilinum), Amerikanische Seide (Cuscuta campestris)

Hauptüberträger: Hyalesthes obsoletus (Windenglasflügelzikade)

PSTVd

Symptome: Keine am Kraut, aber deformierte, spindelförmige, rissige Knollen, Steif aufgerichtete, kleine Stängel mit dunklerem Laub

Hauptwirtspflanzen: Tomate, Kartoffel, Paprika, Pfefferoni, Jasminblütiger Nachtschatten, Enzianbaum, Engelstrompete

Maßnahmen: getestetes Stecklingsmaterial bzw. Saatgut verwenden, Pflanzen/Stecklinge von anderen Wirtspflanzenbeständen im Betrieb getrennt halten, Vermischung verschiedener Partien vermeiden, bei Kulturarbeiten Werkzeuge zwischen einzelnen Partien desinfizieren

Clavibacter michiganensis spp. Sepedonicus

Symptome:

am Kraut: von unten nach oben fortschreitende Welkeerscheinungen, gelbgrüne Blattverfärbungen,

an der Knolle im Längsschnitt glasig-gelbe Verfärbung des Gefäßbündelringes, außerhalb des Gefäßbündelringes liegende Schicht kann leicht vom Mark getrennt werde

Ralstonia solanacearum

Symptome: Welke - im Feldbestand nicht eindeutig zu erkennen, aus dem Stängel befallener Kartoffelpflanze austretende Schleimfäden, Knolle mit Schleimtropfen an den Augen, bei fortschreitendem Befall geht die gesamte Kartoffel in Fäulnis über, Lagerverlust bis 100 %

Durchschneiden der Knolle: Bakterienschleim tritt spontan aus dem Gefäßbündelring aus

Letztmalige Auftreten in AT datiert aus 2008

Coleoptera

Wirt: Weizen, Gerste, Roggen, diverse Gräser (nicht an Hafer)

Aussehen: mattschwarz, Larven typische dunkle Tergite (Rückenplatte)

Entwicklung: Käfer macht im Juni/Juli Reifungsfraß, Eiablage August+September, 100 Eier, Larven schlüpfen 2-3 Wochen, L2 überwintert, Erwachsene Tiere sind Nachtaktiv

Schadbild: L1 fressen Keimpflanzen, zerkaut, zerfasert und vergilbt, Blattspitzen werden in Wohnröhren gezogen, L2 + L3 fressen größere Pflanzen, zerfasern Blätter -> “Knäuel”

Bedingungen: im Herbst warm und trocken, milde Winter (30cm tief gefroren Einstellung Fraß), hoher Wintergetreide Anteil, Weiden mit hohem Gräser Anteil, früher Saartermin

Bekämpfung: Fruchtfolge, Insektizide Fraßgifte, Bodenbearbeitung nach Ernte, Ausfallgetreide und Gräser

Schadschwellen:

Herbst: 1-2 Larven/m2 oder 4-5 geschädigte Pflanzen/m2

Wintergetreide Frühjahr: 3-5 Larven/m2 oder 8-10 gesch. Pfl./m2

Sommergetreide: 1-2 Larven/m2 oder 4-5 gesch. Pfl./m2

Biotroph: leben auf einem Lebenden Wirt und töten diesen nicht, Rostpilze (Puccinia), Brände (Ustilago spp.), Mehltau (Erysiphe betae)

Pertotroph: leben auf totem Material, dass sie getötet haben, Botritys cinerea, Fusarium spp., Netzfleckenkrankheit an der Gerste (Pyrenophora teres)

Saprophyt: leben auf totem Gewebe (nicht selbst getötet), Alternaria brassicae, Tilletia caries, R. solani

3 Arten in Europa wichtig (gibt mehr)

Wirt: Weizen, Hafer, Gerste, Roggen, Futter- und Wildgräsern

Biologie: hohes Vermehrungspotenzial, Geflügelte (alate) und ungeflügelte (aptere) Formen, Generationswechsel (Holozyklus)

Entwicklung: 4 Larvenstadien (bei 21°C Dauer 9 Tage), Männchen sind Geflügelt, Weibchen setzen am Winterwirt geflügelte Weibchen ab, diese paaren sich mit den geflügelten Männchen

Schadwirkung: Saugschäden (Phloemsauger: Entzug von Pflanzensaft), Gelbliche Flecken auf Blättern, Wachstumshemmungen, Blattkräuselungen, TKG sinkt, Honigtau (= Nährsubstrat für Rußtaupilze), Übertragung pflanzenpathogener Viren

Optimale Bedingungen: milde Winter, warmes und trockenes Wetter ab Ährenschieben, hohe Stickstoffgarben, keine natürlichen Gegenspieler wegen fehlender Nützlingsschonung, Winterwirte in Böschungen/Hecke

Schadschwellen:

Wintergetreide im Herbst: 10% befallene Pflanzen

Getreide im Frühjahr/Sommer: 3 -5 Blattläuse / Ähre während der Blüte oder 60-80 % der Ähren mit Blattläusen

Holozyklisch: nach einer pathogenetisch entstandenen Generation folgt eine Vermehrung mit Geschlechtstieren (Bsp. Blattlaus)

Anholozyklisch: nur pathenogenetische Generationen, keine Geschlechtstiere

Parthenogenese (Jungfernzeugung)

Viviparie (Lebendgebären)

jede Blattlaus bringt 50-70 Nachkommen hervor (bei optimalen Bedingungen)

Holozyklisch: zwei geschlechtliche und pathenogenetische (eingeschlechtliche) Generationen

Bleiche Getreideblattlaus

Wirtswechselnd; Winterwirte sind u.a. Wild- u. Gartenrosen, besiedelt ca. ab Mitte Mai Gräser und Getreide; bleibt nur auf den Blättern

Haferblattlaus

Wirtswechselnd; Winterwirt ist u. a. die Traubenkirsche, besiedelt untere Blätter und Blattscheiden der Getreidepflanzen, selten auch die Ähren

Große Getreideblattlaus

nicht wirtswechselnd; Winterwirte sind Wintergetreide und Gräser, besiedelt Getreideähren ab dem Ährenschieben bis zur Blüte

Virusvektoren

Gerstengelbverzwergungsvirus (BYDV) wird von allen 3 Blattlausarten übertragen

Getreidegelbverzwergungsvirus (CYDV) von einer übertragen (Haferblattlaus)

persistente Übertragung -> Vektorinfektiosität auch nach einer Häutung

BYDV und CYDV sind zirkulative Viren:

in der Hämolymphe und dem Speichel des Vektors nachweisbar, Viruspartikel durchdringen die Darmwand und dringen in die Speicheldrüsen ein, Virusübertragung durch Speichel aus dem maxillären Speichelkanal

Myzus persicae ist die weltweit bedeutendste Blattlausarten

Auchenorrhynch

Schadbild: Übertragung des Weizenverzwergungsvirus (CYDV) in persistenter Weise; Larven sind effektivere Vektoren als Adulte

Biologie: saugen an Blättern aller Getreidearten und auch an Gräsern; Adulte und Larven sind sehr mobil, 2 Generationen/Jahr

Bekämpfung: möglichst späte Aussaat von Wintergetreide, bzw. frühe Aussaat von Sommergetreide; Beseitigung von Ausfallgetreide; wird mit erfasst bei der Blattlausbekämpfung

Coleoptera

Rothalsiges Getreidehähnchen

Aussehen: metallisch blau, rotes Halsschild, rote Bein

Verpuppung im Juni: im Boden

Blaues Getreidehähnchen

Aussehen: Halsschild + Flügeldecken metallisch blau

Verpuppung im Juni: in einem Kokon an der Pflanze

Schadbild: streifiger Fensterfraß, dunkle Kotflecken blattoberseits, Verlust von Assimilationsfläche

Wirt: Weizen, Gerste, Wildgräser, tw. Mais, nur rothalsiges auf Hafer

Biologie: Käfer fliegt Ende April/Anfang Mai, Weibchen machen Reifungsfraß, Eiablage Blattoberseiten, gelbliche Larven mit brauner Kopfkapsel sind von Schleimschicht bedeckt, 1 Generation / Jahr

optimale Bedingungen: warme trockene Witterung im Mai, Sommergetreide, (stark behaarte Weizensorten weniger gefährdet)

Bekämpfungsrichtwerte:

Wintergetreide: 1 Larve / Fahnenblatt (bzw. Halm) bzw. 10 % geschädigte Assimilationsfläche

Sommergetreide: 1 Larve / 2 Halme

Heteroptera

Gemeine od. Maurische Getreidewanze

Aussehen: sehr farbvariabel: von hellgrau über rotbraun bis schwarz, abdomenrand mit Karomuste, Scutellum bedeckt den ganzen Hinterleib

Getreidespitzwanze, Spitzling

Aussehen: Färbung graugelb mit mehreren braunen Streifen, braune Punktierung, Kopf und Halsschild dreieckig

Symptome: Larven und Erwachsene saugen an Getreidekörnern (Milchreife), Speichelsekret enthält Protease, Klebereiweiß im Korn wird abgebaut (Backfähigkeit nimmt ab), „Wanzenstichigkeit“: dunkle Einstichstellen mit hellem Hof auf Körnern

Wirt: Weichweizen und Durumweizen besonders empfindlich

Entwicklung: Überwinterung (Adulte) in Waldrändern, Windschutzgürteln, Eiablage an (Un-)Gräser (nicht an Unkräuter) und Getreidepflanzen (Mai – Juli), 5 Larvenstadien, alle ohne Flügel, 1 Generation / Jahr

Optimale Bedingungen: warmes, trockenes Wetter im Frühsommer, Anbauzeitpunkt, Ungräser im Feld

Schadschwellen: 1 - 2 % wanzenstichige Körner, bzw. 1 - 2 Wanzen/m2

evtl. Insektizidbehandlung ab dem Ährenschieben

Thysanoptera

Unbezahnter Getreideblasenfuß, Haferthrips (häufigste Art in Ö)

Aussehen: Adulte, schwarz, Männchen keine Flügel, Nymphen sind hellgelb

Weizenthrips

Aussehen: Adulte, schwarz, Nymphen sind rot gefärbt

Wirt: allen Getreidearten, v. a. an Weizen (Durum), auf Gräsern

Entwicklung: Adulte überwintern, wandern ab April ins Wintergetreide, Eiablage bereits vor dem Ährenschieben in der Blattscheide und hinter die Spelzen, Weibchen fliegen zum Sommergetreide weiter, dort Eiablage in die Blüten

Schaden: besaugen Fruchtknoten und Spelzen, Silberglanz = silbrig-weiße Flecken, schwarze Kottröpfchen, Vergilbung der Ährenspitze, partielle Taubährigkeit

Schadensschwelle: 10 Thripse/Ähre

Optimale Bedingungen: Heißes, trockenes, windstilles Wetter im Frühsommer, Häufiger Anbau von Getreide, Grasraine, Bekämpfung mit Insektiziden sehr schwierig

Lepidoptera

Befall: ab April; Jungraupen an Gespinstfäden durch Wind in Felder verweht, dann Entwicklung der Larven an Getreide (alle Arten)

Schadbild: Minierfraß der Raupen auf Blättern, später auch auf Ähren; Blätter oft versponnen; Steckenbleiben und Umbrechen der Ähren, partielle Weißährigkeit

Schadschwelle: 40-50 Blattminen/m2; Getreidefelder an Waldrändern und Feldgehölzen besonders gefährdet, Randbehandlung oft ausreichend

Diptera

Aussehen und Entwicklung: glasig-weiße Larven der Frühjahrs- u. Herbstgeneration saugen an der Basis der Herzblätter in der Blattscheide; Sommergeneration befällt Ähren, Verpuppung in den Körnern

Schadbild: Im Frühjahr und Herbst vergilben die Herztriebe des Getreides, Pflanzen können absterben,verstärkte Bestockung; im Frühsommer an Gerste und Hafer „Fritkörner“, partielle Taubährigkeit

Bekämpfung: Ausfallgetreide und Quecken bekämpfen; Vermeidung von Frühsaaten im Herbst und Spätsaaten im Frühjahr

Diptera

Befall: glasig-weiße Larven der 1. Generation fressen Fraßrinnen von der Ährenbasis bis zum obersten Knoten im Halm und verpuppen sich dort, 2. Gen. frisst bis zur Sprossbasis

Schadbild:

1. Gen.: Verdickung und korkenzieherartige Verdrehung des obersten Halmgliedes und verbräunte Fraßrinnen, unvollkommenes Ausschieben der Ähre

2. Gen.: Herzblätter vergilben; im Frühjahr sind einzelne Triebe stark verkürzt und verdickt

Bekämpfung: Vermeidung von Frühsaaten im Herbst und Spätsaaten im Frühjahr

Diptera

Entwicklung: Weibchen legen zum Zeitpunkt des Ährenschiebens 5-8 Eier je Blütchen nur bei seitlich aus Blattscheiden heraustretenden Ähren, die gelblichen Larven (keine Kopfkapsel, Brustgräte am 1. Brustsegment) saugen an den Kornanlagen und an den Fruchtknoten

Schadbild: einzelne Kornanlagen zerstört, Kümmerkorn, Missbildungen des Korns

Bekämpfung: Queckenbekämpfung; geringer Weizenanteil in der Fruchtfolge; Randbehandlung oft ausreichend

Choleoptera

Wirt: polyphag an alle Getreidearten, Mais, Hackfrüchte, Gemüse, Zierpflanzen

Ursachen für verstärktes Auftreten: Fehlen bzw. Wegfall wirksamer Insektizide, Weniger bzw. reduzierte Bodenbearbeitung, Brachen und früh gesäte Winterbegrünungen, trockene, heiße Bedingungen im Frühling

Aussehen: groß, dunkelbraun – schwarz, schlank, Larven (Drahtwürmer) glänzend dunkelgelb, dünn, drehrund, nur Käfer können morphologisch bestimmt werden, Drahtwürmer nur mittels DNA-Analyse

Entwicklung: Agriotes-Arten unterscheiden sich zum Teil in ihrer Biologie / Entwicklung, und auch in ihren Standortpräferenzen und Fraßgewohnheiten, manche Arten überwintern als Käfer (z. B. A. lineatus), andere als Larve oder Puppe (z.B. A. ustulatus), Eiablage (der meisten Arten) Mai / Juli in den Boden: bis 160 Eier pro ♀, Schlupf nach ca. 5 Wochen, 9-15 Larvenstadien, je nach Art

verschiedenmehrjähriger Entwicklungszyklus: Drahtwürmer sind 2 – 5 Jahre im Boden aktiv, 3 – 4 Wochen Puppenruhe (Juni – August), schädigende Fraßaktivität ab dem 2. Jahr, fraßaktive Phasen: April – Mai, danach Abwanderung in tiefere Bodenschichten (2. Phase August – Oktober)

Schadbild: ausgehöhlte Saatkörner, angefressene Keimpflanzen, Einbohrlöcher an der Sprossbasis von Jungpflanzen, zerstörte Vegetationskegel

Überwachung: Pheromonfallen (Zahl gefangener Männchen korreliert kaum mit der Anzahl der Larven im Boden (mehrjähriger Zyklus)), Köderfallen: Anlockung durch CO2-Abgabe der keimenden Wurzeln (und Feuchtigkeit)

Bekämpfung: Anbau empfindlicher Kulturen (besonders Mais, Kartoffeln) nach Umbrüchen meiden, Intensive Bodenbearbeitung, v.a. im Juni/Juli bei trockenen, heißen Bedingungen (Larven trocknen schnell aus), Puppenruhe wird gestört, Vermeidung von Ausfallgetreide, chemische Bekämpfung mit Insektiziden

Bekämpfungsrichtwert: Mais: 1-2 Drahtwürmer/m2

Coleoptera

Westlicher Maiswurzelbohrer

Wirt: Mais, Gräser, z.B. Borstenhirse, Sorghumhirse, Miscanthus, tw. auch Pollen von z.B. Sonnenblume und Kürbis, Verbreitung durch Flug und Verschleppung (war mal Quarantäne Schädling, Monitoring mit Pheromonfallen in Ö)

Aussehen: Käfer schwarzer Kopf mit langen Fühlern, Halsschild, Hinterleib und Beine gelb, schwarze Deckflügel mit seitlich gelegenen, gelben Streifen, Larven: weißlich, 3 Beinpaare, Kopfkapsel und Chitinschild am Hinterende sind braun

Entwicklung: Hauptflugzeit der Käfer Anfang Juli bis Anfang September, Reifungsfraß an Blättern, Narbenfäden, Pollen und milchreifen Körner, danach Eiablage: 300 – 400 Eier (Boden), Überwinterung im Eistadium, Larven schlüpfen ab Ende April, Höhepunkt Larvenaktivität (= Fraß an Maiswurzeln) im Mai und Juni, Verpuppung im Juni

Schäden: Larven fressen an den Wurzeln oder bohren sich ins Wurzelgewebe ein, Wasser- und Nährstofftransport ist beeinträchtigt, Infektionen durch Pilze ist begünstigt, Verlust der Standfestigkeit, Käfer fressen Narbenfäden, Störung bei der Befruchtung möglich, „Gänsehals“: durch Verlust der Standfestigkeit richten sich geschädigte Pflanzen nach anfänglicher Lagerung an Sekundärwurzeln wieder auf und krümmen sich nach oben

Bekämpfung: Fruchtfolge (Landesverordnung), Unkrautbekämpfung, Maßnahmen zur Stärkung der Pflanzenentwicklung (frühe Saat, optimal vorbereitetes Saatbett, ausreichende und zeitgerechte Düngung, Bewässerung, Sortenwahl: Sorten mit starkem Wurzelwachstum) Bodeninsektizide gegen Larven (bei der Saat), Insektizidspritzung gegen Adulte (Stelzentraktor notwendig), entomopathogenen Nematoden/Pilze, Verwirrungsmethode mit Sexualpheromonem, resistente Pflanzen: transgener Mais

Lepidoptera

Wirt: Körner-, Zucker- und Silomais, an Hirse und Sorghum, Paprika

Aussehen: Falter unauffällig ockergelb mit rötlichbrauner Zeichnung bzw. mit gelben Querstreifen, Raupe gelblich - graubraun/rosa, schwarze Kopfkapse

Entwicklung: Eiablage ab Ende Juni (Blattunterseite), Raupen fressen zunächst oberflächlich (Fraßlöcher in den oberen Blattetagen), bohren sich nach 1-2 Häutungen in die Stängel ein, Verpuppung an der Stängelbasis im nächsten Frühjahr

Schaden: Eigelege und Fraßlöcher in den oberen Blattetagen, Bohrmehl und Raupenkot in Blattachseln, Bohrlöcher (minieren zuerst aufwärts, dann abwärts), Abgeknickte Maisfahne, Raupe im Kolben, Wasser und Nährstofftransport eingeschränkt, Förderung von Fusarieninfektionen (Mykotoxine)

Schadschwelle: Schadensschwelle 10-15 Eigelege pro 100 Pflanzen (Überwachung Falterflug, Betsimmung Eiablagezeitpunkt)

Bekämpfung: Bodenbearbeitung (überwinternde Maiszünslerlarven eingearbeitet), Insektizide, biologische Bekämpfung mit Trichogramma evanescens (Schlupfwespenlarve)

Diptera

Befall: Frühjahrsgeneration legt Eier am gerade aufgelaufenen Mais ab; Larven fressen an der Basis der Blätter

Schadbild: Löcher und parallel zu den Blattadern verlaufende Fraßgänge; Verkrüppelung der Blätter; häufig Seitentriebe, die nur geringe Kolben bilden

Bekämpfung: vorbeugende Insektizidapplikation im 1-2 Blattstadium

Gastropoda

Vorkommen: polyphag, Schäden aber besonders an Winterraps im Herbst

Aussehen: Kopfregion, Kriechsohle, Eingeweidesack, Mantel, Radula

Schaden: direkter Verlust von Blattmasse durch typischen Schabfraß, sekundäre Fäulnis, Qualitätsverlust durch Verschmutzungen, Auflaufschäden an Winterraps: Verlust der Keimlinge bzw. junger Rapspflanzen

Befallsfördernde Faktoren: milder Spätsommer und nasse Böden, Nachbarschaft von Bracheflächen, Zwischenfrüchten, Grünland, Feldfutterflächen, Uferböschungen, Waldrändern

Kontrolle: Schleimspur, Schneckenkot, Schnecken sind nachtaktiv, Kontrollen mit Jutesäcken, feuchte Holzbretter o. ä., auch mit einigen Schneckenkörnern versehen

Schadwschwelle: 10% geschädigte Keimpflanzen

Bekämpfung: Bodenbearbeitung: feinkrümeliges Saatbett mit guter Rückverfestigung, Jugendentwicklung der Rapspflanzen fördern, Nahrungsangebot reduzieren: Strohabfuhr, keine Zwischenfrüchte, Ausfallraps beseitigen, Kalk, Kalkstickstoff, chemische Bekämpfung: Metaldehyd, Eisen-III-Phosphat

Gastropoda

Genetzte Ackerschnecke

Aussehen: Grundfärbung ist gelblich-weiß oder grau bis rötlich-braun, netzartige, schwärzliche Zeichnung auf dem Rücken

Entwicklung: nach wechselseitiger Begattung (Zwitter) Eiablage von Frühjahr bis Herbst möglich, Eier glashell, es werden bis 300 Eier in Gelegen von 10-30 Stück an geschützten, feuchten Stellen abgelegt, Jungschnecken schlüpfen nach 3-4 Wochen, sind nach 6 Wochen selbst wieder fortpflanzungsfähig, leben ca. 6-8 Monate

Überwinterung hauptsächlich als Ei, aber auch als erwachsenes Tier

Genetzte Ackerschnecke kann auch an unterirdischen Pflanzenteilen fressen

Große (Spanische) Wegschnecke

Aussehen: alle Farbvariationen von rot - braun - grau möglich, Jungtiere kontrastreich gezeichnet, „bunt“

Entwicklung: Paarung im Sommer, pro Schnecke werden 200 bis 400 Eier geschützt abgelegt, Jungtiere schlüpfen entweder im Herbst oder aber nach Ende des Winters (Februar/März), 1 Generation pro Jahr

Rapserdfloh

Rapsstängelrüssler oder Großer Kohltriebrüssler

Rapsglanzkäfer

Coleoptera

Wirt: Raps, Rübsen, Kohlarten und überwinternde kreuzblütige Unkräuter

Aussehen: Käfer metallisch blauschwarz, Beine gelbrot, Sprungvermögen; Larven schwarzköpfig, schmutzig-weiß und schwarz gefleckt

Entwicklung: Käfer fliegen ab September in die Rapsbestände ein, Reifungsfraß, Eiablage in den Boden, Larven schlüpfen, bohren sich in die jungen Wurzeln bzw. in den Stängelgrund der Blätter des Rapses ein, minieren im Stängel, Überwinterung als Larve, Verpuppung ab Mai, 1 Generation pro Jahr

Schadbild: Lochfraß auch durch Kohlerflöhe (aber keine Eiablage), Fraß der Larven im Stängel und in den Blattstielen: in die Fraßgänge kann Wasser eindringen, das im Wintergefriert und die Stängel zum Aufplatzen bringt; Sekundärbefall durch Pilze möglich

Schadschwelle: ≥ 10% geschädigte Blattmasse bis 4-Blatt-Stadium ≥ 25-35 Käfer / Gelbschale vom 4- bis 6-Blatt-Stadium innerhalb von 3 Wochen

Bekämpfung: Insektizide Beizmittel, Einsatz registrierter Insektizide (mit Netzmittel)

Coleoptera

Rapsstängelrüssler und Gefleckte Kohltriebrüssler sehr ähnlich

Wirt: Raps, Senf, Rübsen und Kohlgewächse auch kreuzblütige Wildkräuter

Schadbild: große weißliche Eiablagestellen, Fraßgänge und Käferlarven in Stängeln

Schadschwellen: Wenn Schalen ohne Gitter verwendet werden, muss der Schwellenwert verdoppelt werden

Förderung von kräftigen Pflanze

keine zu dichten Bestände

größtmöglicher Abstand zu Vorjahresflächen (wenn es möglich ist)

chemische Bekämpfung: Insektizide, Applikationszeitpunkt unbedingt vor dem Beginn der Eiablage; Bienenschutz beachten

Coleoptera

Wirt: außer Raps und Rübsen zahlreiche andere kreuzblütige Arten wie Leindotter, Ölrettich, Schwarzer und Weißer Senf, Wildkruziferen wie Ackersenf und Hederich

Aussehen: Käfer oval geformt, schwarz mit grün- bis bläulich glänzendem Rücken, Fühler mit kleiner Keule, Larve gelblich-weiß, schwarzbrauner Kopf, auf jedem Segment sind oberseits 2 bis 3 dunkle Flecke

Entwicklung: Hauptzuflug der Käfer zu den Rapsbeständen bei Tagestemperaturen über 15°C, Käfer ernährt sich von Blütenstaub, frisst dafür Löcher in die Knospen, danach legen die Weibchen 1 - 2 Eier pro Knospe ab, Larven ernähren sich vom Blütenstaub, nach ca. 4 Wochen wandern die Larven auf den Boden ab, wo sie sich verpuppen, Jungkäfer erscheinen im Sommer, 1 Generation / Jahr (Fraßschäden an den noch geschlossenen Blüten)

Schaden: Fraßlöcher an / in den Knospen, zum Teil werden die Fruchtknoten verletzt und somit die Knospen zerstört, Knospen vergilben, trocknen ein und fallen ab, der Fraß der Larven an Pollen und Nektar ist harmlos

Schadschwelle: 8 Käfer pro Haupttrieb bis BBCH 55, 10 Käfer pro Haupttrieb ab BBCH 55 bis Blühbeginn

Bekämpfung: Nützlinge schonen (Schlupfwespe), chemische Bekämpfung

Coleoptera

Befall: Käfer fliegt ab Blüte in den Bestand, frisst Löcher in die jungen Schoten und legt Eier hinein; Larve frisst Kornanlagen aus; zur Reife verlässt Larve die Schote (Ausbohrloch), Verpuppung am Boden

Schadbild: Bissstellen an den Schoten, Sekundärinfektionen durch Ausbohrloch; eindringendes Wasser führt zu Auswuchs

Schadschwelle: 1-2 Käfer/Pflanze, Gelbschale, Schüttelprobe

Bekämpfung: Bienen ungefährliches Insektizid bei Gefahr des Befalls mit Kohlschotenmücke

Diptera

Befall: Zuflug ab Blüte; Mücke legt Eier durch Löcher, die der Kohlschotenrüssler verursacht hat, in die Schoten ab; Larven saugen im Schoteninneren. 2-3 Generationen/Jahr

Schadbild: Larven scheiden beim Saugen an den Körnern und Schotenwände Toxine aus, die zum Vergilben der Schoten führen; Schoten öffnen sich vorzeitig (gelblich, platzen auf)

Schadensschwelle: 1 Mücke pro 3 Schoten

Bekämpfung: Insektizide (Bienen ungefährliche Mittel)

Hymenoptera

Befall: v. a. an Zwischenfruchtraps; viele Wirtspflanzen; 1. Generation ab Mai (keine Bedeutung), 2.Generation ab August, schwarze Afterraupen fressen an allen grünen Pflanzenteilen.

Schadbild: Loch- bis Kahlfraß

Schadschwelle: 1 Larve pro Pflanze

Bekämpfung: Insektizidbehandlung (wenn Bestand als Futter genutzt)

Diptera

Befall: Eiablage Ende August an oder in die Nähe des Wurzelhalses der Jungpflanzen

Schadbild: Fliegenmaden fressen an Haar- und Seitenwurzeln, später im Wurzelkörper; Jungpflanzen können vertrocknen, ältere Pflanzen haben Nährstoff- und Wassermangel, bleiben im Wachstum zurück

Bekämpfung: Später Anbauzeitpunkt, insektizide Beizmitte

Keine regelmäßig bekämpfungswürdigen Schädlinge in Sonnenblume

Drahtwürmer: im Jugendstadium Schäden möglich, Bekämpfung mit registrierten Insektiziden

Thripse (Zwiebelthrips und andere): im Keimblatt- bis 4-Blatt-Stadium selten Saugschäden an den jungen Blättern (Silberglanz)

Schnecken: Kontrollen wichtig; Einsatz von Schneckenmitteln

Blattläuse (z. B. Bohnenlaus): nur bei sehr starkem frühzeitigem Befall bekämpfungswürdig; Teilflächen- bzw. Randbehandlung sinnvoll

Vögel (Rabenvögel, z.B. Nebelkrähe) Konfliktarten

Coleoptera

Aussehen: Käfer, braun bis mattschwarz, hinter dem Pronotum weißer Fleck, Larven weiß, braune Kopfkapsel

Entwicklung: Käfer verlassen ihr Winterlager im Boden in der 2. Maihälfte, anfangs Schabfraß an Stängeln und Blüten, bei Temperaturen von 20 – 25 °C legen sie ihre Eier in die Wände der jungen Mohnkapseln (bis zu 8 Larven pro Kapsel, auch mehr möglich), entwickeln sich in den Kapseln und fressen die Samen, zur Verpuppung verlassen sie Kapsel durch selbst gebohrtes Bohrloch, fallen zu Boden

Schadbild: an den Fraßstellen der Käfer tritt Milchsaft aus, der die Kapseln schwarz färbt, Bohrloch verfärbt sich braun bis schwarz, sekundäre Pilzinfektionen möglich, Schabfraß

Schadensschwelle: 3 Käfer pro m2 während der Mohnblüte

Bekämpfung: Anlegen von Fangstreifen (Feldrand früher bestellen), Insektizidbehandlung

Coleoptera

Befall: Reifungsfraß an den Blättern der Mohnpflanzen; Eiablage unter die Epidermis von Blattstielen und tw. in den Boden

Aussehen: Larven gelblich-weiß, braune Kopfkapsel, minieren zunächst in den Blättern und Blattstielen, wandern dann in den Wurzelbereich und fressen in der Hauptwurzel

Schadbild: Käferfraß an den auflaufenden Pflanzen (Sommermohn), Fraß der Larven an den Wurzeln: Pflanzen vertrocknen, brechen um

Schadensschwelle: 3-4 Käfer / m Saatreihe

Bekämpfung: Fruchtfolge, Insektizid bei Flugbeginn

Erdflöhe: Arten nicht bekannt, Käfer verschiedener Arten können beim Auflaufen Schäden an den Jungpflanzen verursachen (Lochfraß); kein Problem wenn gebeiztes Saatgut verwendet wird

Blattläuse: Arten nicht bekannt; Saugschäden

Mohngallmücke: selten; Schadbild: Kapseln entwickeln sich nach der Blüte unregelmäßig, sind zum Teil gekrümmt. Im Inneren rötlich-gelbe bis orangerote Gallmückenlarve

Saatenfliegen: sind in manchen Jahren ein Problem

Gartenkugelspringer: treten sehr selten auf

Virusübertragende Blattlausarten: sind regelmäßig zu bekämpfen

Diptera

Aussehen: Erwachsene sehen kleinen grauen Stubenfliegen ähnlich, haben dunkle, unterbrochene Streifen am Rückenschild, Maden weißlich, walzen förmig

Entwicklung: Eier (weiß, stiftförmig) werden auf keimende Wirtspflanzen oder unverrottetes Pflanzenmaterial abgelegt, Maden ernähren sich primär von fäulnisbewohnenden Bakterien, die sich bei ungünstigen Keimungsbedingungen (feuchte Witterung, Kälteeinbruch) an Keimlingen entwickeln, dringen teils in pflanzliches Gewebe auch aktiv ein, Verpuppung im Boden, mehrere Generationen / Jahr

Schadenbild: Fehlstellen in den Reihen auflaufender Pflanzen, keimende Wirtspflanzen bleiben im Wachstum zurück, abgefressene Wurzeln, Löcher und Bohrgänge in Wurzelhals, Stängel und Keimblättern

Bekämpfung: frühe Aussaat, Vermeidung von Flächen mit hohem Anteil an nicht verrottetem organischem Material bzw. mit Mist gedüngte Flächen bzw. Flächen nach Umbruch, Anbau abfrostender Zwischenfrüchte

Collembola

Aussehen: Erwachsene dunkelgrau bis graubraun mit Aufhellungen im Bereich der Augen, Jungtiere heller pigmentiert, Sprungvermögen

Biologie: Bodenbewohner, Verwerter abgestorbener Biomasse, trockentolerant, können nach warmen Wintern und einem warmen Mai hohe Populationsdichten aufbauen

Schadbild: nagen kleine Näpfchen in die Ober- und Unterseite der Keimblätter und der darauf folgenden Laubblätter, Vereinzelt wird der Stängel unterhalb der Keimblätter (Hypocotyl) benagt, Fraßspuren verschwinden ab dem 5. Folgeblatt, die Kürbispflanzen werden nicht nachhaltig geschädigt

Homoptera

Grüne Pfirsichblattlaus (Myzus persicae), Grünstreifige Kartoffellaus, Grüne Gurkenblattlaus

nicht persistente Übertragung des Zucchinigelbmosaik (ZYMV) (auch durch mechanische Verletzungen, Samen)

Bekämpfung: virusverdächtige Einzelpflanzen entfernen, Saatgutbehandlung, Blattlausbekämpfung während und nach dem "Laufen" weniger zielführend (Verletzungsgefahr); Sortenwahl bei Speisekürbis

Homoptera

Wichtigster Schädling an Körnererbse

Aussehen: spindelförmig, Färbung grün bis leicht gelblich oder rosa bis rot, auf Erbse (und Ackerbohne) hauptsächlich grüne Individuen

Biologie: Überwinterung als Ei an winterharten Leguminosen, fliegt kurz vor der Blüte in die Erbsenbestände ein, hohes Vermehrungspotential (bis 10 Larven pro Tag)

Schaden: Wachstumshemmungen durch extrem starke Saugaktivität der Läuse, Reduktion von Fruchtansatz, Vektor von Blattroll- und Mosaik-Viren der Erbsen und Ackerbohnen, Vektoren von Nanoviren v.a. bei Grünerbse, Virusübertragung verstärkt Gesamtschaden

Schadensschwelle: 5 Blattläuse pro Trieb bei kleineren Pflanzen vor der Blüte, 10 Blattläuse pro Trieb bei größeren Pflanzen (ab der Blüte)

Bekämpfung: Frühe oder sehr späte Saat weicht dem Hauptzuflug der Blattläuse aus, Nützlingsaufkommen beobachten, Insektizideinsatz

Lepidoptera

Vorkommen: bevorzugt als Wirtspflanze Erbsen, Leguminosen (Linsen), Wicken, Rotklee, bei tocken-warmer Witterung Ertragsverluste bis zu 30 % möglich

Aussehen: Falter Grundfärbung grau- bis hell-olivbraun; Vorder- und Seitenrand der Vorderflügel schwarz und weiß gestreift, Raupe weißlich, gelblichweiß oder hellgrünlich, Rückseite mit braunen Warzen, Kopfkapsel und Nackenschild dunkelbraun

Biologie: Falter erscheinen Ende Mai bis Mitte Juni, Eiablage an Triebspitzen, Blättern, Kelchblättern der Erbsen, Raupen dringen in die sich streckende Hülse ein, nach ca. 3 Wochen Fraßzeit an den Samen platzen die Hülsen auf oder die Raupen bohren sich ein Auswanderungsloch in die Hülsenwand, Überwinterung und Verpuppung in einem Erdkokon im Boden

Schaden: im Hülseninneren angefressene Samen sowie Gespinstreste und Kotkrümel, aufgeplatzte Hülsen, Ausbohrloch, sekundäre Fäulnis der befressenen Samen möglich

Schadensschwelle: Kontrolle mittels Pheromonfallen: 10 Falter pro Falle und Tag

Bekämpfung: frühe Erbsenaussaat, frühe, rasch abblühende Sorten, Insektizidapplikation ab Blühbeginn

Sprenkelkrankehit (Ramularia collo-cygni)

Symptome: Nekrosen (Sprenkel), dunkelbraungefärbt mit gelbem Vorhof

Biologie: bei ausreichend Feuchtigkeit Bildung von Konidienträgern (Blattunterseite), Toxinbildung (Rubelline), kein Telomorph bekannt, Sonneneinstrahlung beschleunigt Nekrosenbildung

Management: Felder in Gebieten mit gerninger Wintergerstendichte, später Anbau, gesundes Saatgut, Fungizid, Ernterückstände, Auflaufgetreide und Unkraut entfernen

Wirt: Gerste

Coleoptera

Auftreten: Erbse, Ackerbohne, anderen Leguminosen, in Region mit höherer Anbaubedeutung

Aussehen: Käfer Körper schwarz, gelbgraue Beschuppung, helle Streifen auf den Flügeldecken; kurzer breiter Rüssel. Larve weiß mit gelb-brauner Kopfkapsel

Biologie: Käfer fliegen ab März/April in die Bestände, Reifungsfraß an Blättern, Eiablage vereinzelt in den Boden in Pflanzennähe bis Juli, nach 3 Wochen schlüpfen die Larven; Verpuppung im Boden

Schadbild: Käferfraß: halbkreis- oder bogenförmige Ausschnitte an den Blatträndern, nur an Sämlingen manchmal bedeutend, Larven fressen Wurzelknöllchen und später auch kleine Wurzeln, Schaden meist unbedeutend, mindert jedoch N-Eintrag auf Bracheflächen: Vorfruchtwert der Erbse wird vermindert

Schadensschwelle: Käferfraß: 10 % Blattflächenverlust, ertragsmindernde Schädigung der Knöllchen ab 20 Käfer/m2

Bekämpfung: selten notwendig Insektizidapplikation

Homoptera (Aphis fabae)

In der Gattung Aphis spp. finden sich die weltweit wichtigsten Blattlausarten (eigentlich ein „Artenkomplex“)

Aussehen: breit oval, Färbung matt schwarz bis dunkelgrün; Fühler und Beine hell, dichte Kolonien mit schwarzen Läusen

Biologie: viele verschiedene Sommerwirtspflanzen

Schaden: Wachstumsstörungen durch Saugtätigkeit, Starke Honigtauproduktion, Virusvektor für z.B. das Bohnengelbmosaik-Virus und andere Virosen

Bekämpfung: Visuelle Kontrollen, Nützlinge schonen, Insektizidapplikation bei Beginn der Koloniebildung (dann evt. Randbehandlung ausreichend)

Choleoptera

Befall: Eiablage Juni & Juli an junge Erbsenhülsen; Larve bohrt sich in die Hülse und in den Samen ein; vor der Verpuppung erzeugt die Larve eine Höhlung unter der Samenschale, in die ein „Fenster“ genagt wird; erwachsene Käfer schlüpfen noch im Sommer, verlassen die Erbse aber erst im nächsten Frühjahr; Freilandschädling

Schadbild: Samen (Erbsen) sind an- und ausgefressen

Bekämpfung: Befallsfreies Saatgut verwenden; Insektizidbehandlung nach Blühbeginn

Ähnlich in Aussehen & Biologie: Ackerbohnenkäfer (B. rufimanus)

Lepidoptera

Auftreten: weltweit verbreiteter Wanderfalter, wandert jedes Jahr neu aus Afrika nach Mitteleuropa ein, starke Schäden an Sojabohne; viele Wirtspflanzen

Aussehen: Falter Grundfarbe hell ziegelrot, dunkel gefleckt, variabel, Raupen, dunkel mit heller Rückenlinie, mit Dornen besetzt

Biologie: Falter legen Eier einzeln an Disteln und an Sojabohne ab (bis 500 Eier / ♀), Raupen spinnen sich ab Ende Mai / Anfang Juni in Sojablättern ein, Raupen fressen die Blattoberfläche ab, spinnen die Sojablätter auch zu schützenden „Tüten“, Verpuppung an den Pflanzen im Juli, 2 Generationen

Schadensschwelle: Kahlfraß möglich, Schadensschwelle 20 Raupen / m Pflanzreihe, Insektizidbehandlung

Coleoptera

Verbreitung aktiv (Flug) und/oder Verschleppung

Wirtspflanzen: Kartoffeln (Hauptwirtspflanze), einige andere Nachtschattengewächse

Aussehen: Käfer, unverwechselbar gefärbt, stark gewölbt, 4 Larvenstadien, typische Buckellarve, dunkelrot mit schwarzer Kopfkapsel

Biologie: Käfer überwintern, erscheinen ab dem Auflaufen der Kartoffel (April), machen Reifungsfraß (ca. 2 Wochen), Eiablage in Gruppen auf Blattunterseite, bis 200 Eier pro Weibchen, Larvenentwicklung ca. 3 Wochen (20°C), 3 Häutungen, Verpuppung im Boden, nach 2 Wochen schlüpft der Käfer, evt. 2. Generation (Schaden gering)

Schadbild: Imagines und Larven fressen an den Blättern, Loch- und Skelettierfraß der Larven, in der Folge reduzierte Knollenbildung, Kahlfraß und Ertragseinbußen von 50 % sind möglich

Schadensschwelle: 1-2 Käfer, ein Eigelege oder 10-15 Larven/Pflanze, Kontrolle der Eigelege (Blattunterseite) wichtig, Gegenmaßnahmen jedenfalls vor 20% Blattverlust

Maßnahmen: Fruchtfolge nicht zu eng, Abstand zwischen Beständen, Beseitigung von Durchwuchs, Sortenwahl: eher frühe Sorten

Direkte Bekämpfung: Bacillus thuringiensis var. tenebrionis (Fraßgift), Azadirachtin (Neem), Pyrethrine, Spinosad, Chemisch-synthetische Insektzide aus verschiedenen Wirkstoffgruppen, Abblasen von Käfern und Larven

Nematoda

Vorkommen: weltweit verbreitet, Quarantäneschädlinge in der EU, Meldepflicht

Wirtspflanzen: Kartoffeln (Hauptwirtspflanze), auch Tomaten, Aubergine und andere Solanaceae

Biologie: Zysten (mit 200-300 Eiern) überdauern im Boden, Zyste (=abgestorbenes Weibchen), Larven schlüpfen schon in der Zyste L1, Wurzelausscheidungen induzieren Larvenschlupf (L2), Larven dringen in die Wurzelspitze ein, induzieren Bildung eines Nährgewebes

Entwicklung: Männchen wurmförmig, verlassen Wurzel, Weibchen schwellen an, durchbrechen Wurzelrinde, bleiben mit Kopfende im Gewebe, Männchen begatten Weibchen, Weibchen zunächst weiß, sterben dann ab und werden zu braunen Zysten („Eibehälter“), Zysten können bis zu 20 Jahre im Boden überdauern, 1 Generation pro Jahr, verschiedene Pathotypen

Schadbild: schlechtes Auflaufen der Kartoffel, Pflanzen sind im Wachstum gehemmt, vergilben, verkümmern, nesterweiser Befall, nach ca. 10 Wochen kleine helle Zysten an den Wurzeln erkennbar

Schadensschwelle: Konsumkartoffeln: 150 - 200 Eier (+ Larven) je 100 g Boden, Ertragsausfälle bis zu 50% möglich

Bekämpfung: Anerkanntes Saatgut, Bodenuntersuchung, Betriebshygiene, weitgestellte Fruchtfolge, Bekämpfung von Durchwuchs, Unkratubekämpfung, anbau resistenter Sorten

Coleoptera

Vorkommen: polyphag an allen Getreidearten, primär Mais, Hackfrüchte, Gemüse etc. auch Raps, Kartoffelanbau

Biologie: fraßaktiven Phasen der Drahtwürmer Anfang April und Mitte Mai und ab Ende August bis Oktober, Drahtwürmer werden von atmungsaktiver Wurzelmasse angelockt, Orientierung am CO2-Gradienten durch Zellatmung der Wurzeln, Feuchtigkeit von Nahrungsquelle und Boden hat großen Einfluss, Gefahr der Austrocknung

Schadbild: Knollen, Bohrfraß: Fraßgänge führen ins Knolleninnere (Lochgröße vom Larvenstadium abhängig), Gänge verkorken

Bekämpfung: Insektizide Granulate beim Kartoffellegen applizieren (aber im Herbst (wo die meisten Schäden entstehen) ist das Insektizid im Zweifel nicht mehr vorhanden), Bodenbearbeitung (v. a. nach der Getreideernte): Austrocknen der Junglarven, Störung der Puppenruhe, Störung der Käfer bei der Eiablage, Fruchtfolge: mehrjähriges Kleegras vermeiden, kein Kartoffelanbau nach Kleegras, Fruchtfolge sehr wichtig (mehr Sommerrungen einplanen → Zeit für intensivere Bodenbearbeitungsvorgänge im Frühjahr), Entomopathogene Pilze brauchen die Feuchtigkeit → häufiges Problem bei verkäuflichen Mitteln, Versuche mit Fangpflanzen zeigen wechselnde Erfolge

Grüne Pfirsichblattlaus (Myzus persicae)

Kreuzdornlaus

Faulbaumlaus

Grüngefleckte Kartoffellaus

Grüngestreifte Kartoffelblattlaus

Bedeutung: v.a. in der Saatkartoffelproduktion und Nachbau Schaden, Direktschaden durch Saugtätigkeit

Virusübertragung: Blattrollvirus – persistent; S-, A-, M-, Y-Virus - nicht persistent (Mekrspruch)

Vorbeugende Maßnahmen: Moderate Stickstoffdüngung, Reduzierung der Infektionsmöglichkeiten für Läuse (Vermeidung von Kartoffeldurchwuchs, Virusfreies Pflanzgut, Trennung von Konsum- und Vermehrungsschlägen, Bereinigung von virusinfizierten Pflanzen, Unkrautbekämpfung), Virussymptome eher sichtbar, wen die Pflanze Stress hat

Direkte Bekämpfung: Chemisch-synthetische Insektizide, zufliegende Läuse frühzeitig (Kontaktmittel), angesiedelte Läuse mit systemischen Mitteln bekämpfen

Lepidoptera

Befall: Höhepunkt Falterflug Juni/Juli, Eiablage an die Pflanzen (800 / ♀), Raupen fressen zunächst an den Blättern, wandern ab dem 3. Larvenstadium in den Boden und fressen an den Wurzeln; Larven rollen sich bei Berührung zusammen, 6 Larvenstadien

Schadbild: Fraßschaden an Blättern und Knollen

Wirtspflanzen: polyphag

Bekämpfung: entomopathogene Nematoden, Insektizide

„Rübenpille“

Samenkörner werden in einer Pillierungsmasse einbettet

Schichtaufbau ist eine Verarbeitungstechnologie zur exakten Dosierung der Saatschutzmittel

Insektizide Wirkstoffe gegen Rübenschädlinge in der Rübenpille mit Kontaktwirkung oder systemischer Wirkung aus verschiedenen Wirkstoffgruppen

1 Fungizid

2 Hüllmasse

3 Fungizide, Insektizide

4 Pigmenthülle, Hüllschicht

Coleoptera

Aussehen: Käfer, grau bis bräunlich, Flügeldecken etwas heller mit einer dunklen Querbinde, der Rüssel ist kurz und gedrungen

Wirt: Zuckerrüben, Unkräuter wie Weißer Gänsefuß und Melden

Biologie: Rübenderbrüssler überwintert in Rübenfeldern, erscheinen ab Ende März bis Anfang Mai, Wirtspflanzen werden zunächst bei niedrigen Temperaturen durch Wanderung aufgesucht, ab ca. 22°C durch Zuflug, Reifungsfraß an den Keim- und Jungpflanzen der Zuckerrübe, Eiablage Mai/Juni in die oberste Bodenschicht, Larven ernähren sich von Wurzeln, später von den Rüben, Verpuppung im Juli/August im Boden, Schlupf im Spätsommer, jedoch Überdauerung oft in der Puppenwiege

befallsfördernde Faktoren: periodisches Massenauftreten: Förderung durch warmes, trockenes Wetter zum Zeitpunkt des Reifungsfraßes und der Eiablage

Schadbild: Blattrandfraß bis Kahlfraß: Jungpflanzen können bis zum 4-Blattstadium ganz abgefressen werden. Schaden an den Rübenwurzeln bei mehr als 15 Larven pro Pflanze möglich

Schadschwelle: 1 Rübenderbrüssler pro m²: 1 Käfer kann bis 10 Jungpflanzen pro Tag fressen Große Larve: 4. Larven Stadium; Kleine Larve: 1. Larven Stadium

Bekämpfung: keine Rübenschläge neben vorjährigen Befallsflächen, Entwicklung der Jungpflanzen fördern, Monitoring und Massenfang mit Lockstofffallen auf Vorjahresflächen (Riechen ihre Wirtspflanzen), Anlegen von Fallrillen, „Rübenpille“, Applikation von registrierten Insektiziden

Coleoptera

Vorkommen: Nordeuropäischer (C. concinna) und Südeuropäischer (C. tibialis) Rübenerdfloh, Zunehmende wirtschaftliche Bedeutung

Wirt: Zuckerrübe und Unkräuter

Aussehen: Südeuropäischer etwas kleiner als N.; metallisch grün bis kupfer- und bronzefarben, Larven weiß mit schwarzen Flecken

Biologie: Verlassen das Winterlager im April, Reifungsfraß an den auflaufenden Zuckerrüben, Eiablage an die Rübenpflanzen (C. concinna) oder in den Boden (C. tibialis), Larven fressen an den Wurzeln, bzw. in den Blättern, Verpuppung im Juni, 1 Generation / Jahr

optimale Bedingungen: Trockenheit und höhere Temperaturen im April/Mai fördern das Aufkommen großer Populationen

Schadbild: Fenster- und Lochfraß der Käfer während des Reifungsfraßes an den auflaufenden Zuckerrüben, Junge Zuckerrübenpflanzen sind bis 2-Blattstadium besonders gefährdet

Schadschwelle: Bekämpfungsrichtwert: 20% Blattfläche vernichtet oder 40% geschädigte Pflanzen bis 2 Blatt-Stadium, Fast täglich Kontrollen nötig

Bekämpfung: Insektizider Beizschutz, Kontaktinsektizide

Nematoda

Bedeutung: kein Quarantäne Schädling mehr, wirtschaftlich die wichtigsten Nematoden im Zuckerrübenanbau, bis zu 50% Ernteverlust möglich

Wirt: Kreuzblütler (Brassicaceae), Fuchsschwanzgewächse (Amaranthaceae), Knöterichgewächse (Polygonaceae), zahlreiche Unkräuter

Unterscheidung zu anderen Nematoden: zitronenförmige Zysten

Biologie: 2-3 Generationen pro Jahr

Schadbild: befallene Pflanzen welken, Rübenkörper bleiben klein, Ausbildung eines „Wurzelbartes“ (Bärtigkeit der Rübe), stecknadelkopfgroße, weiße Weibchen an den Wurzeln, nesterweiser Befall

Schadschwelle: ca. 500 Eier und Larven pro 100 ml Boden

Bekämpfung: Bodenuntersuchungen, Betriebshygiene, Verschleppung von befallenen Pflanzen vermeiden, Fruchtfolge: 4 Jahre, Anbau von Zwischenfruchtpflanzen wie Mais, Roggen usw. veranlasst die Nematodenlarven zum schlüpfen und verhindert die weitere Entwicklung, Anbau von Nematoden resistenten Ölrettichsorten bzw. Senfsorten, Anbau von Neutralpflanzen wie Getreide usw., Anbau von toleranten bzw. resistenten Zuckerrübensorten, Nematizidbehandlung

Coleoptera

Befall: überwinterte Käfer wandern ab April in die Rübenfelder ein, Eiablage ab Mai in Wurzel Nähe; Altkäfer und später Jungkäfer fressen an Keimlingen, Keim-und Herzblättern der jungen Rübenpflanzen; Larven (behaart) verursachen wenig Schaden an den Faserwurzeln

Schadbild: Lochfraß an den Keimlingen, sekundäre Infektionen möglich

Bekämpfung: gebeiztes Saatgu

Virusvektoren an Rübe

Homoptera

Grüne Pfirsichblattlaus überträgt die wichtigsten Virosen der Rübe:

mildes (BMYV) und nekrotisches (BYV)Vergilbungsvirus der Zuckerrübe

Starke Schäden treten bei frühem Blattlausbefall, v. a. nach milden Wintern, wenn virusbeladene Blattläuse lebend überwintern, auf

Rübenlaus (Schwarze Bohnenlaus) überträgt ebenfalls das milde Vergilbungsvirus (BMYV) der Rübe (nicht so effizient)

Kann bei starkem Frühbefall (Mai) durch Saugschäden Ertragseinbußen von bis zu 20 % verursachen

Diptera

Befall: Frühjahrsgeneration legt Eier an den jungen Rübenblättern ab (ca. Mitte Mai); Larven (Maden) fressen in Blattminen und vermindern die Assimilationsfläche der Jungpflanzen; Verpuppung im Boden, 3 Generationen pro Jahr

Schadbild: An den Keim- und Laubblättern treten zunächst Gangminen auf, die dann zu den durchscheinend weißlich-grünen Platzminen erweitert werden, trocknen anschließend aus und verbräunen

Bekämpfung: gebeiztes Saatgut

Rhynchosporium-Blattflecken (Rhynchosporium secalis)

Symptome: wässerige Flecken, junge Blätter welken und sterben ab, Flecke vertrocknen, grauweiß, auf Spelze große helle Flecken, schwach rot bis dunkelbraun gesäumt

Biologie: kein Telomorph bekannt, Konidien Bildung ab 4°C (15-20°C), mehrere Stunden Feuchtigkeit, in gemäßigten Klimagebieten

Wirt: Gerste (Phatotypen), Roggen, Triticale, Quecken und Gräserarten

Management: Fungizideinsatz, Unterpflügen (Erntereste, Beseitigung Ausfallgetreide), späte Ausaat, keine kurzstrohigen Sorten (oder Wachstumsregler)

Septoria-Blattdürre (Zymoseptoria tritici)

Symptome: ovale, gelbgrüne bis wässrig-graugrüne Flecken, streifige Nekosen

Biologie: Pyknidien entstehen in vergilbendem Gewebe, wichtigste Getreidekrankheit in Ö und Europa, kühl-feuchte Anbaugebiete

Wirt: schädigt vor allem Weizen, seltener Triticale, Roggen, Gräser

Management: Fungizid, Einarbeiten, Minimalbodenbearbeitung nur bei geeigneter Fruchtfolge, Saatgut, Sortenwahl

DTR-Blattdürre, HTR-Blattflecken (Pyrenophora tritici-repentis)

Symptome: hellbraune, rundliche bis unregelmäßige Flecken an Boden nahen Blättern, dunkelbraunes Zentrum mit gelber, chlorotischer Zone (Ptr ToxA Nekrosen, Ptr ToxB, Ptr ToxC Chlorosen)

Wirt: Weizen, Triticale und Gräser (Quecke), selten Roggen, Gerste, nicht auf Hafer

Management: Fungizid, Einarbeiten, Minimalbodenbearbeitung nur bei geeigneter Fruchtfolge, Saatgut, Sortenwahl