H.E. Färbung
Farbstoff
Hämalaun: Kernfarbstoff, positiv geladen= basisch; Eosin: Zytoplasmafarbstoff, negativ geladen= sauer
H.E. Prinzip
Physiko-Chemische Färbung
Hämatoxillin + Natriumjodat à oxidiert = Hämatein
HämateinàFarbbeize Aluminiumion (Metall)= Hämalaun/basischer Farbstoff
Eosin= Tetrabromfluoreszein Farbstoff àfärbt in leicht saurer Lösung +-geladenen Proteine (Zytoplasma)
H.E. Anwendungsbereiche
· Übersichtsfärbung
· Routine
· Schnellschnitt
àwird bei jedem histologischen Präparat verwendet
H.E. Fehlerquellen
Hämalaun-spezifisch:
Haltbarkeit überschritten àÜberreife/Oxidation
Nicht gebläut
Eosin-spezifisch:
Eosin nicht angesäuert
Eosin bei Gebrauch nicht gemischt
Reagenzien vertauscht
H.E. Durchführung lang
Reagenz
Zeit
1. Xylol 1
2. Xylol 2
3. Xylol 3
4. Xylol 4
2 min
5. Alkohol 100%
6. Alkohol 100%
7. Alkohol 96%
8. Alkohol 96%
9. Alkohol 70%
10. Aqua dest.
11. Hämalaun
12. „Bläuen“ (Leitungswasser)
13. Eosin
10 min
Bis 2 min
14. spülen in A.D
15. Alk. 70%
16.Alk 96%
17.Alk 96%
18. Alk 100 %
19. Alk 100%
Alles 2 min
20. Xylol 1
21.Xylol 2
22. Xylol 3
23,Xylol 4
24: eindecken in Eukitt
Gesamtdauer
60 min
H. E. Färbeergebnis
Blau/Basophil
Zellkerne, Cytoplasma basophil, Bakterien, Kalk, Knorpel, Knochen, Schleim
Rot/eosinophil
Cytoplasma eosinophil, kollagenes Bindegewebe, Erys
H.E. kurz
Dauer (min)
(1. Alk. 100%)
Kurz, wenn nicht vor fixiert
1. Hämalaun nach Mayer
1
2. „Bläuen“ in Leitungswasser
3. Eosin
4. Spülen A.D.
Kurz
5. Alk. 70%
6. Alk. 96%
7. Alk 96%
8. Alk 100%
9. Alk 100%
10. Xylol 1
11. Xylol 2
12. Xylol 3
13. Xylol 4
Alles 4x eintauchen (Gesamtdauer 1 min)
14. Eindecken in Eukitt
Van Gieson
Prinzip
· Trichromfärbung ->Physiko-chemisch/physikalisches Prinzip
Durch Elektroadsorption und Dispersität
Färbeergebnis
· Zellkerne: schwarz
· Cytoplasma, Muskulatur, Schleim, Kolloid: lehmgelb
BG kollagen : rot
Anwendungsgebiet
· Bindegewebsdarstellung
àCirrhosen, Fibrosen, Sklerosen
Fehlerquellen
Speziell: ->pH-Wertschwankungen
Farbniederschläge durch A.D. vor Fe-Hämatoxillin
Eisenhämatoxylin nicht mehr haltbar (Oxidation)
Nicht differenziert
Van gieson Durchführung
Entparaffinierung/Xylol
X4, je 2 min
Absteigende Alkoholreihe bis 70%
Je 4x tauchen
Eisenhämatoxylin nach Weigert
5 min
Spülen A.d.
Kurz differenzieren in HCl-Alkohol
3-4x kurz
Bläuen bei fließendem Leitungswasser
A.D.
Van-Gieson-Gemisch
5-15 sek
Spülen in A.D.
kurz
Aufsteigende Alkoholreihe
Xylol
X4 je 2 min
Eindecken in Eukitt
Gesamtdauer: 60/35 min
PAS
Zweizeitige indirekte, chemische Färbung
Perjodsäure: Glycolgruppen der Kohlenhydrate werden in Aldehydgruppen umgewandelt
Schiffs Reagenz: Aldehydgruppen reagieren mit Shciffsreagenz zu einem roten Farbstoff (Fuchsin)
· Zellkerne: blau
· Cytoplasma: gelblich
· Basalmembran, schleimbildende Drüsen, Muskel
· Kollagenes BG
· Basalmembran
Schleim
PAS Fehlerquellen
Haltbarkeit von Perjodsäure und Schiffsreagenz überschritten(2-3 d haltbar)
Perjodsäure+ Schiffsreagenz nicht im Kühlschrank aufbewahrt/gekühlt
Speziell Hämalaun
Haltbarkeit überschritten
Durchführung
A.D
Perjodsäure 1% wässrig
Fließend wässern
5min
Schiffsreagenz
Hämalaun (Sigma)
Xylol x 4
Je 2 min
Masson Goldner
Trichromfärbung ->Physiko-chemisch/physikalisches Prinzip
Eisenhämatoxilin nach Weigert: Regressiver Kernfarbstoff
Ponceau de Xylidine, Goldorange: Cytoplasmafarbstoff, feindispers
Lichtgrün: BG-Farbstoff, grobdispers
Zellkerne: braunschwarz
Cytoplasma, Muskulatur: rot
Erythrozyten: orange
Fe-Hämatoxylin
Farbniederschläge durch A.D. vor Fe-Hämatoxylin
Eisenhämatoxilin nicht mehr haltbar (Oxidation)
Falscher Kernfarbstoff
Alcianblau
Physikochemische Färbung für saure Mucopolysaccharide
Alcianblau:
Basischer Farbstoff, spezifisch für saure MPS, Verstärkung der Spezifität durch pH-Wert Veränderungen auf 2-3 pH
Wird nicht angesäuert, stellen sich sogar Zellkerne /kollagene Fasern dar, welche das Differenzieren erschweren
Kernechtrot:
Kernfarbstoff/Cytoplasmafarbstoff
· Rot: Zellkerne
· Farblos: Cytoplasma
· Blau: saure MPS, Knorpelsubstanz, Granula der Mastzellen
Schleim in Lunge, Darm, Knorpel
Alcianblau nicht angesäuert
pH-Schwankung, Farbstofflösung falsch angesetzt
Zeiten nicht eingehalten
Falsche Reihenfolge
Papanicolaou
Prinzio
Polychromfärbung nach Papanicolaou, Standardfärbung Zytologie
PAP1: Kernfärbung mit Hämatoxylin
PAP2: Zytoplasmafärbung mit OG 6
PAP3: Polychrom-Lösung
Physikalisch-chemische Färbung
1. Hämatoxylin+ Na-Jodat >Oxidation zu Hämatein
· Hämatein mit Metallionen (Aluminium) > Hämalaun (basischer Farbstoff)
2. Hämalaun= Indikatorfarbstoff -> in saurer Lösung <3 an neg. geladene Gruppen (Chromatin, Histone, saures Glucoamin)
3. Bläuen ->alkalisches Milieu: bringt Blaufärbung
Gegenfärbung des Cytoplasmas , verschiedene Substanzen bringen je nach pH usw. unterschiedliche Farbqualitäten (eosinophil, cyanophil)
Strukturen
Farbe
Kerne
Zytoplasma
Nebenbefunde
Kernstruktur kontrastreich, dunkelblau (basophil)
->Cyanophil: unreife Plattenepithelien,
->eosinophil: Superficialzellen
->farblos: cervikales Zylinderepithel
->Erys: hellrot/rot, Bakterien: blau
Standardfärbung weltweit in der Onkologie
In gynäkologischer Cytologie rasche Orientierung über die Hormonwirkung zum Zeitpunkt der Abstrichnahme
Pappenheim
Panoptische Färbung, Kombination der MAY_GRÜNWALD-Färbung mit GIEMSA
MAY-Grünwald:
· Farbstoffe Methylenblau + Eosin
· Methylenblau + Eosin= Salz ->Methyleneosinat
Giemsa:
Azur A, Azur B, Methylenblau, Eosin
Färbeergebnisse
· Zellkerne
· Cytoplasma
· Granula
· Kerne Leukos
· ZP Erys
· ZP Lymphos
· Granula neutrophil
· Granula basophil
· Granula eosinophil
· Rötlich-violett bis blau
· Rötlich-orange, grau-blau, hellblau
· Violett-rot-orange
· Blau bis rötlich-violett
· Rosa
· Hellblau
· Hellviolett
· Dunkel violett
· Ziegelrot bis orange
Anwendungsbereiche
Sehr wichtige Färbung in der Cytodiagnostik (Hämatologie, Blutausstrich)
Auch Standard in onkologische Cytologie
Giemsa
Physiko-chemische Färbung
Auch „Azur-Eosin-Methylenblaufärbung“ genannt
Saure Bestandteile der Zelle mit negativer, elektrischer Ladung (DNA, RNA) sind basophil ->blaue Färbung
Basische Bestandteile: azidophil ->Färben sich mit sauren Farbstoff rot
Neutrophile Bestandteile färben sich mit beiden Farbstoffen an
(Färbung durch pH-Wert der Lösung, Pufferlösung und Färbezeit beeinflusst)
· Tiefblau: Zellkerne, (Ztoplasmabestandteile
· Blau: Bakterien
· Hellrot: Granula (eosinophil-Erythrozyten, Bindegewebe
· Purpur : Mastzellen, Granula, Schleim
Lymphorgane
Entzündungen(allg.)
Bakterien
Spezifisch
· pH-Wert Änderung
· Zeiten nicht eingehalten
Allg.
· Farbe falsch gelöst
· Reihenfolge vertauscht
· Unsauber gearbeitet
Herz
Makroskopie
(Myokard+Epicard sichtbar) Organ /Gewebeausschnitt
Organ
Morphologisches Bild
Endocard
· Endothel
· BG (elastische Fasern, glatte Muskelzellen, Blutgefäße Purkinje Fasern)
Myocard
· Herz-Muskelzellen ( quergestreift verzweigt, verschiedene Richtungen)
· 1-2 mittige kerne, Glanzstreifen (TreppenförmigeZellverbindungen
· Blutgefäße
· Querstreifen,
· BG
Epicard
· Fettzellen
· Nerven
· Blutgefäße,
· einschichtiges Plattenepithel + Mesothel = Tunica Serosa
Zunge
· Organausschnitt
· Schichtung erkennbar
· Gewebestränge verlaufend in unterschiedliche Richtungen
Tunica Mucosa
àL. epithelialis
· mehrschichtig unverhorntes Plattenepithel
·Papillen: Fungiform, Vallatae, Foliatae (+ Geschmacksknospen), Filiformis ( ohne Geschmacksknospen + verhorntes Plattenepithel)
->L. propria
· Gefäße
Drüsen:
· serös (Ebnersche) Drüsen
· Mucöse Speicheldrüsen
· Gemsichte (Nihnsche) Drüsen
àL. muscularis mucosae
· Einzelne glatte Muskelzellen
T. muscularis
· Verschiedene Richtungen
· Quergestreifte Skelettmuskulatur
Zungenunterseite
· Ohne Papillen
· Mehrshcichtig unverhorntes Plattenepithel
Ösophagus
1. Mehrschichtig unverhorntes Plattenepithel
àL. propria
2. BG
3. Gefäße
4. Glatte Muskelzellen /Lymphfollikel
Tela submucosa
1. BG
2. Gefäße
3. Drüsen, mucös
4. Nerv (Plexus submucosus oder Meissner)
1. 2 Schichten, innere Ring, äußere Längsmuskulatur
2. Quergestreift oberes 1/3 oder glatte Muskulatur untere 2/3
3. Nerv ( Auerbach oder P. myntericus), Gefäße, BG
T. adventitia
3. Fett, Mesothel
Duodenum
QS , halber QS, Gewebeausschnitt, Schichten erkennbar
Duodenum, Jejunum, Ileum
T. mucosa
è L. epithelialis
einschichtig hochprismatisches Epithel+ Becherzellen
è L. propria
Gefäße, BG
è L. muscularis
Lymphfollikel (Peyer’sche Plaques ->Ileum)
Zotten
· Blattförmig ->Duodenum
· Fingerförmig -> Jejunum
· Plump ->Ileum (fast keine)
· Glatte einzelne Muskelzellen
Krypten
· Von Duodenum zunehmend bis Ileum
BG
Gefäße
Drüsen
Brunner’sche Drüsen (Duodenum)
T. muscualris
Ring-/Längsmuskulatur
Glatt
Gefäße, Nerven
T. serosa
· Fett
· Mesothel
Leber
Gewebeausschnitt
Stroma Kapsel
· Septen
Parenchym
· Läppchenbildung
· Radiäre Zellanordnung der Hepatozyten Richtung Zentralvene
· Begrenzt mit bindegewebigen Periportalfeldern mit Gefäßen und Gallengang
->vena lobularis (großlumig)
-> Arteria interlobularis
( kleinlumig)
->Duchtus interlobularis
( kubisches Epithel, große, runde Kerne)
Lunge
Gewebeausschnitt, grobmaschige Netzstruktur
Stroma/Kapsel
· Elastische Fasern
· Mesothel (äußere Haut)
· Alveolen
· Kapillaren
· Plattenepithel
· Pneumocyt I
Bronchien
· Sternförmiges Lumen
· Knorpelplatten (Ø bei Bronchioli)
· Muskel glatt
· Flimmerepithel (evtl. Bronchioli flacheres Epithel)
Colon
Keine Zotten , nur noch Krypten; sehr dicht beieinander, im Epithel vermehrt Becherzellen ->helles Bild
Plicae semilunares: im mikroskopischen Präparat nicht sichtbar->Muskel erschlafft nach entnahme
· Evtl. QS/ halber QS
· Mit Lumen
->L. epithelialis
hochprimatisches Epithel+ viele Becherzellen
Lymphfollikel
->L. muscularis mucosae
keine Zotten mehr, nur noch Krypten
inneren Ring- und einer äußeren Längsmuskelschicht, aus glatter Muskulatur
äußere Schicht sehr dünn, an 3 Stellen bündelförmig verdickt (Tänien)
Tänien raffen Darmwand -> innen Plicae semilunares, außen Haustren
H.E.
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